Full text of "Revista chilena de entomología"

See other formats

a De: Je 
7 A 

.s Pla, 5 a % E MY Sis aio fa Wes: 
NES S z : SE k pl j HS E 
Ape NE dE A xi EURATO 


no a 


E 
Ea 
ONE , : y 1 x ds 
AA h Pei ANN : E y : E 
ME ias da en AN y oa cia z y de iaa dec 


ASS 


. SS 
Pd ARA ee ra ASE a Preta 
SN ea Sd AN de ET . E n 
PELAS dra Ñ p > Mid A DE, 
A de A ES s 3 + de 
Se det dejos Ger PO : y y e ds EE 3 LR, z PANAM Pte GE Fi 
A as A : ll d x 4 MOE 6 EA Matas TS a 


AO 


OS ER 
ES dina RS LAR o a o add ets 
Poda e 

tai 


CIO 
e 
UTE s 
Meda 


INS 


AA de 
TEA 
MAN oa 
Mitad aida E > 
A A ; o z E p CA A a y rr pea, a 
: Ñ bre E E a 3 S > 3 te 
a Bin Atos 
Agen a ES > . ; 
E Pa ri y z . => z sl y 

e a tin AA a e 5 a S s ñ S > Plena 


ave b y , $ $ . 
A 4 , s AS 


E 
Pa 


PORRA 


En pe e o a Ea a Y 
MR S 
NA de 


AS 


HARVARD UNIVERSITY 
13 
Library of the 


Museum of 


Comparative Zoology 


Ae - Ni 
la 
bi 
J 
p 5 5 k 
; 
q : 
y í 7 
7 
y y Y 
eN y Y 
e 
% 
A: 
y 
| 
j 
ES , 
y b 
a ' ' na 
y ; 
n Ñ 
w Y V e de, 
, Í ñ , 
f A 
] SEIS ) 
y y 1 ( 4 
Ñ A vi 1 ) 


MCEZ ISSN 0034 - 740X 


VOL. 19 (1991) de o 


Inspice structuram! 


SE VISTA CHILENA 
D E 


ENTOMOLOGÍA 


Santiago 
99] 


REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA 


Propietaria de la Revista: 
SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA 
Domicilio legal: 
Sección Entomología, Museo Nacional de Historia Natural, 
interior Quinta Normal, Santiago 


Personería Jurídica concedida por 
Decreto Ministerio de Justicia N” 2.204, del 10 de Agosto de 1965 


Fundada en Santiago el 4 de Junio de 1922, 
con el nombre de Sociedad Entomológica de Chile 


Consolidada y reorganizada con el nombre de 
Sociedad Chilena de Entomología el 30 de Marzo de 1935 


Toda correspondencia y colaboraciones deben ser dirigidas a: 
Correspondence and collaborations should be addressed to: 


SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA 
Casilla 21132, Santiago (21) - Chile 


Ordenes de subscripción (excepto para Chile) 
deben dirigirse a nuestros distribuidores oficiales: 
Subscription orders (except for Chile) 
should be addressed to our official distributors: 


IBEROAMERICANA 
K.D. Vervuet oHG 
Wielandstrasse 40 

D - 6000 FRANKFURT 1 


ISSN 0034 - 740X 


MCZ 
LIBRARY 
VOL. 19 (1991) JUN 0.8 1993 Conspice naturam, 
Inspice structuram! 
HARVARD 


UNIVERSITY 


I¡NENSTES LA 0d LLENA 
D E 


ENTOMOLOGÍA 


La publicación del presente volumen 
ha sido posible gracias al generoso legado efectuado a nuestra Sociedad, 
por el Dr. CHaRLES P. ALEXANDER 


SUMARIO 


Asís, J.D.; S.F. Gayubo y J. Tormos. Comportamiento nidificador de dos especies de 
Cerceris y descripción de la larva madura de C. bicincta (Hymenoptera: Sphecidae) 
AskevoLD, 1.S. On some poorly known, missidentified and mislabelled Chilean 
Chiysomelida (Coco 
ARTIGAS, J.N. £e N. PaPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera): keys for 
identification with an atlas of female spermathecae and other morphological 
details. VII. 5. Subfamily Stenopogoninae Hull - Tribe Tillobromini, with des- 
criptions of three new genera and two new species, and a catalogue of the 
Ncotropicalispecies a a tl a 
Irrnza R., J.H.; A. Lucero y M.A. MoraLeEs. Hermetismo en sociedades de Campono- 
tus morosus Smith, 1858 (Hymenoptera: Formicidae) en nidos artificiales ..... 
CAMOUSSEIGHT, A. e I. BusramaANTE. Descripción de los huevos de los fásmidos 
(Brasmatodeaikseudophasmatidao) de Cil 
Chrarpa, E. y M. Rojas. Observaciones en la nidificación de Pachodynerus peruensis 
(Satissure) (Ely menoptera Vespidae: Uca 
NuUMHAUSER T., J. Observaciones sobre el género Pycnosiphorus: grupo fasciatus 
(ColeopteraribUcanidas) nui AN 
Sárz, F. Fecas de herbívoros introducidos en Chile semiárido como hábitat para el 
desarollo de nsectos ol 
BarriGa, J.E. y T. Fichet. Observaciones biológicas sobre Callisphyris molorchoides 
(Guérin-Méneville, 1838) (Coleoptera: Cerambycidae) ......oooooomom..o.ooo.. 
BurckHarDr, D. € D. Acosri. New records of South American Peloridiidae (Ho- 
mopter: Colconhynci a a EE 


NoTA CIENTÍFICA 


BARRIGA, J.E. y T. FicHeT. Anotaciones sobre la biología de Platynocera virescens (F. et 
G.) (Coleoptera: Cerambycidae) 


0000000000000000000000060%9000000:0000000000 


29 


=J 
=I 


REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGÍA ISSN 0034 - 740X 


Publicación oficial de la Sociedad Chilena de Entomología, 
Casilla 21132, Santiago (21) - Chile 
debe citarse: Rev. Chilena Ent. 
Representante legal: El Presidente en ejercicio de la Sociedad 
Director Responsable: Lic. Mario ErcGuera D. 
Editor: Prof. Jarme SoLERVICENS A. 


Comité Editorial Permanente 


Dr. Jaime APABLAZA H. 
Dr. JorcGE ArTIGAS C. 
Dr. Danko Brncic J. 
Prof. RaúL CorrtéÉs P. 

Dr. RenÉ CovarruUBIAS B. 
Dr. ROBERTO GONZÁLEZ R. 
Prof. José HERRERA G. 
Prof. ViCENTE Pérez D'A. 
Prof. Jaime SOLERVICENS A. 
Prof. HaroLDO Toro G. 


Sociedad Chilena de Entomología 


Directorio 1989-1990 


Presidente: Dr. Daniel Frías L. 
Vicepresidenta: Dra. Fresia Rojas A. 
Secretaria: Dra. MarTa Lewin O. 
Tesorero: M.Sc. Mario ELGUETA D. 
Custodio y Bibliotecario: Ing. Agr. ErNesTo Prapo C. 


Directorio 1990-1991 


Presidente: Dr. DanieL Frías L. 
Vicepresidenta: Dra. Fresia Rojas A. 
Secretaria: Dra. Marta Lewis O. 
Tesorero: M.Sc. Mario ELGUETA D. 
Custodio y Bibliotecario: Prof. Juan MoronI B. 


Directorio 1991-1992 


Presidente: Prof. Ja1me SOLERVICENS A. 
Vicepresidente: Ing. Agr. ErnesTo Prapo C. 
Secretaria: Lic. AubREY A. GREZ 
Tesorero: Dr. ArIEL CAMOUSSEIGHT M. 
Custodio y Bibliotecario: Ing. Agr. Juan E. BARRIGA 


Impreso en los talleres de 
EDITORIAL UNIVERSITARIA 
San Francisco 454 - Santiago 
en el mes de diciembre de 1991 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 5-10 


COMPORTAMIENTO NIDIFICADOR DE DOS ESPECIES DE CERCERIS 
Y DESCRIPCION DE LA LARVA MADURA DE C. BICINCTA 
HYMENOPTERA: SPHECIDAE) 


Joser D. Asis**, SeverIANo F. Gayubo” y José Tormos? 


SUMMARY 


The nesting behaviour of C. bicincta was studied at Brácana (Granada, Southern Spain). The females 
construct multicellular nests that they provision with chrysomelids. Maggots of the miltogrammine fly 
Pterella melanura were obtained in more than 30% of the cells, while some cuckoo wasps and velvet ants 
may also attack this species in the study area. Data are also offered on the biology of C. sabulosa, whose 
females capture Hymenoptera. A description is also given of the mature larva of C. bicincta, whose 
morphology is similar to that of other species of the genus previously studied. 


RESUMEN 


Se presentan datos sobre el comportamiento nidificador de C. bicincta, obtenidos a partir de un estudio 
realizado en la localidad de Brácana (Granada, sur de España). Las hembras construyen nidos 
multicelulares que aprovisionan con coleópteros crisomélidos. Se obtuvieron larvas del miltogramino 
Pterella melanura en más de un 30% de las celdas, mientras que algunos crisídidos y mutílidos también 
podrían atacar a esta especie en el área de estudio. Adicionalmente, se aportan algunos datos sobre la 
biología de C. sabulosa, cuyas hembras capturan himenópteros. Se describe, además, la larva madura de 
C. bicincta, cuya morfología es semejante a la de las otras especies del género estudiadas hasta el 


momento. 


INTRODUCCIÓN 


Cerceris Latreille, 1802 es el género de la fami- 
lia Sphecidae más ampliamente distribuido, 
encontrándose en todas las regiones zoogeo- 
gráficas. Es bastante uniforme en lo relativo a 
su comportamiento nidificador (Alcock, 1974; 
Evans, 1971; Evans y Rubink, 1978). Algunas 
de las pautas comunes a las especies del géne- 
ro (Evans, 1971) son, entre otras: los nidos con 


"Department de Biologia Animal, Biologia Celular i 
Parasitología, Facultat de Ciéncies Biológiques, Universi- 
tat de Valéncia, Dr. Moliner, 50. 46100 Burjassot (Valén- 
cia), España. 

“Dirección actual: Departamento de Biología Animal, 
Ecología, Parasitología, Edafología y Química Agrícola, 
Facultad de Biología, Universidad de Salamanca, 37071 
Salamanca, España. 

“Departamento de Biología Animal, Ecología, Parasi- 
tología, Edafología y Química Agrícola, Facultad de Bio- 
logía, Universidad de Salamanca, 37071 Salamanca, Es- 
paña. 

(Recibido: 25 de octubre de 1990. Aceptado: 14 de 
diciembre de 1990.) 


un primer tramo vertical; el hecho de que 
permanezcan abiertos durante el aprovisiona- 
miento, rodeados por un anillo de arena; el 
transporte mandibular de las presas; el alma- 
cenamiento de las presas en la galería, antes de 
ser transferidas a la celda y el mantenimiento 
de un solo nido que se agranda progresiva- 
mente durante la totalidad del período de acti- 
vidad. No obstante esta uniformidad, las pre- 
sas capturadas por las especies del género son 
bastante diversas destacándose la especificidad 
mostrada en la elección de las mismas por los 
miembros de cada especie (Evans y Rubink, 
1978; Gess, 1980). 

A pesar de que han sido numerosos los 
trabajos dedicados al estudio de la biología de 
las especies de este género, el elevado número 
de ellas —más de 850 según Bohart y Menke 
(1976)— hace que todavía existan muchas de 
las que no se conoce prácticamente nada sobre 
su biología. En el presente trabajo se aportan 
datos sobre el comportamiento nidificador de 
Cerceris bicincta Klug, 1835, de la que sola- 
mente se conocían algunas observaciones rea- 


6 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


lizadas por Tsuneki (1965), describiéndose 
también su larva madura que era desconoci- 
da; se dan a conocer además, otros datos rela- 
tivos a Cerceris sabulosa (Panzer, 1799). 

C. bicincta es una especie que se distribuye 
por el sur de Europa y norte de África, llegan- 
do hasta Afganistán y Mongolia (Bohart y 
Menke, 1976), mientras que C. sabulosa es una 
especie propia de la Región Paleártica y de la 
que se conocen bastantes datos relativos a su 
biología, tales como el tipo de presas que cap- 
turan, la estructura de sus nidos y algunos de 
sus parásitos (Ferton, 1905 y 1910; Grandi, 
1929) 


MATERIALES Y MÉTODOS 


Las observaciones se llevaron a cabo en la lo- 
calidad de Brácana (Granada, UTM 3058 VG 
1618, 510 m altitud), en una zona cercana al 
río Genil, durante los días 12-16 junio de 
1989. Se excavaron para su estudio cuatro 
nidos de C. bicincta y dos de C. sabulosa. 


RESULTADOS 
Cerceris bicincta Klug 
Descripción del área de nidificación 


La agrupación estudiada se localizaba en un 
camino horizontal poco transitado, con suelo 
arenoso-arcilloso muy compacto, difícilmente 
excavable y desprovisto de vegetación. 

La mayor parte de los nidos — alrededor de 
20— se encontraban agrupados en un área de 
aproximadamente 3 X 3 m, aunque, también, 
se observaron algunas hembras que habían 
establecido sus nidos separados de esta agru- 
pación. 


Comportamiento de las hembras y 
descripción del nido 


La actividad de las hembras comienza hacia las 
0900. Después de abrir la entrada del nido, en 
el cual pasan la noche, permanecen varios mi- 
nutos inmóviles, con la cabeza obstruyendo la 
boca del mismo. Si observan cualquier movi- 
miento extraño en el exterior se introducen 
rápidamente hacia adentro, volviendo a sacar 
la cabeza al poco tiempo. Es frecuente oír un 
sonido característico, producido con las alas, 


poco antes de que saquen la cabeza en la entra- 
da. Después de pasar varios minutos obser- 
vando las inmediaciones del nido, sacan poco 
a poco el cuerpo y a continuación, súbitamen- 
te, salen al exterior, sobrevolando el nido du- 
rante varios segundos. Pautas similares han 
sido descritas en varias especies del género 
(Alcock, 1974; Byers, 1978; Elliott et al., 1981). 


Las presas son transportadas en vuelo, con 
el vientre hacia arriba y cogidas por las ante- 
nas con las mandíbulas de la avispa; las patas 1 
y II también intervienen en la sujeción de la 
presa durante el transporte. 


Al llegar al nido, la hembra se introduce 
directamente en el mismo, desplazando la 
presa ligeramente hacia atrás y arrastrándola 
tras ella al interior. Las hembras depositan las 
presas capturadas en la galería principal, 
transfiriéndolas posteriormente a la celda. 


Los nidos permanecen abiertos durante el 
aprovisionamiento, rodeados por un anillo de 
arena de 5-10 mm de altura y 30 mm de diá- 
metro (diámetro del nido 5 mm), procedente 
de la excavación de la galería. Cuando las 
hembras se encuentran en el interior realizan- 
do tareas de excavación de nuevas celdas, ta- 
pan la entrada del nido. 


El nido (Fig. 1) se inicia con un tramo prác- 
ticamente vertical de 5-9 cm (x = 6,6, n = 4), 
pasando luego a tener una pendiente mucho 
más suave (5-15%). Las celdas se encuentran a 
uno y otro lado de la galería principal, separa- 
das de ésta por cortas galerías secundarias de 
1,5-5 cm (x = 3) y a una profundidad de 8-15 
cm (x 11,2; n= 13). 

Las celdas contienen un número variable 
de presas, entre 5-16'(x ="8,9 1 =10)] Las 
presas capturadas por las hembras en el área 
de estudio son coleópteros crisomélidos, per- 
tenecientes a las siguientes especies: 


Clytrinae 
Clytra atraphaxidis (Pallas): 19. 


Coptocephala floralis (Olivier): 158 8,159 2. 
Tituboea biguttata (Olivier): 6 88, 12. 


Cryptocephalinae 
Cryptocephalus crassus Olivier: 18. 
Cryptocephalus pominorum Burlini: 48d. 


Cryptocephalus sexmaculatus Olivier: 4 dd, 
Lisa 


Asís et al.: Nidificación de dos especies de Cerceris 7 


Figura 1: Nido de C. bicincta en sección. 


Enemigos naturales 


En el área de nidificación aparecen numero- 
sas hembras de Pterella melanura (Meigen, 
1824) (Diptera: Sarcophagidae) que permane- 
cen sobre pequeñas piedras y persiguen a las 
hembras de C. bicincta que transportan presas 
al nido; en algunas ocasiones se observaron 
hasta tres de estos dípteros siguiendo a una 
hembra a pocos centímetros de distancia. Al 
llegar la hembra al nido e introducirse en el 
mismo, tratan de larvipositar sobre la presa 
transportada. 


Cuando las hembras advierten que son per- 
seguidas por un díptero, no se dirigen directa- 
mente al nido, sino que siguen volando, por lo 
general, más cerca del suelo, efectuando giros, 
e incluso volviéndose hacia sus perseguidores 
y manteniéndose frente a ellos en vuelo está- 
tICO. 


Del total de las 26 celdas estudiadas en los 
nidos excavados en el área de estudio, ocho de 
ellas contenían larvas del miltogramino Ptere- 
lla melanura. 


Además de los miltograminos, también, se 
observaron hembras de Sigilla dorsata (Fabri- 
cius, 1798) y Smicromyrme partita (Klug, 1835) 
(Hymenoptera: Mutillidae), así como de Chr)- 
sis bidentata prommnea Linsenmaier, 1959 y He- 
dychrum longicolle Abeille, 1877 (Hymenopte- 
ra: Chrysididae) introduciéndose en los nidos 
de Cerceris bicincta. 


Cerceris sabulosa (Panzer) 


Se descubrieron varios nidos de esta especie 
en la misma área de nidificación de C. bicincta, 
aunque en menor número. 

En un nido sólo se pudo encontrar cuatro 
presas en la galería, mezcladas con partículas 
de arena —como es habitual en otras especies 
del género— (Evans, 1971; Kurczewski y Mi- 
ller, 1984). La galería era vertical, y las presas 
se encontraban a una profundidad de 19 cm, 
no pudiéndose hallar ninguna celda. En un 
área cercana —de terreno bastante más suelto 
y fácil de excavar—, se descubrió otro nido 
que presentaba dos celdas, una sobre la otra, al 
final de una galería vertical de 10 cm. En la 
superior se encontraron nueve presas y el 
huevo del himenóptero, mientras que la infe- 
rior sólo contenía cuatro presas. Las presas 
extraídas de los nidos fueron las siguientes: 


Halictidae 


Halictus (Halictus) maculatus Smith, 1848: 
ue, 

Lasioglossum (Evylaeus) planulum (Pérez, 
1903): 19. 

Lasioglossum (Evylaeus) pseudoplanulum 
(Blúthgen, 1924): 283. 

Lasioglossum (Evylaeus) sphecodimorphum 
(Vachal, 1892): 109 2. 

Lasioglossum (Evylaeus) aff. truncaticolle (Mo- 
rawitz, 1872): 19. 

Lasioglossum sp.: 1 $. 

Lasioglossum sp.: 1 ej. 


8 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


Aunque se observaron algunas hembras de 
Pterella melanura (Meigen, 1824) (Diptera: 
Sarcophagidae) persiguiendo a las hembras 
de Cerceris sabulosa, no se encontraron larvas 
parásitas dentro de los nidos excavados. 


Descripción de la larva de 
Cerceris bicincta 


La descripción se basó en tres ejemplares fija- 
dos en alcohol y tratados posteriormente con 
KOH (10%, 70%C) para su estudio microscópi- 
co, aunque las medidas facilitadas se refieren a 
uno solo de los tres ejemplares estudiados. Las 
abreviaturas empleadas en la descripción son: 
a = anchura, al = altura, d = diámetro, l = 
longitud. 


Aspecto general 


Cuerpo fusiforme (| = 14 mm; a = 4mm) (Fig. 
2). Lóbulos pleurales bien desarrollados; dor- 
so de los segmentos con un área oval elevada a 
ambos lados de la línea mediodorsal. Segmen- 
to anal formando una proyección cónica, con 
el lóbulo supranal ligeramente mayor que el 
infranal. e 

Tegumento espinuloso en toda su superfi- 
cie (Fig. 4), a excepción de las áreas ovales 
dorsales, en donde es liso; también aparecen 
algunas sedas dispersas, de tamaño ligera- 
mente superior al de las espínulas. En el seg- 
mento anal, las espínulas son menores en ta- 
maño, apareciendo, además, un mayor núme- 
ro de sedas. 

Estigmas (d = 85-97 pm; x = 90; n = 10) 
con las paredes del atrio recorridas por líneas 
formadas por engrosamientos del tegumento 
(Fig. 5); comunicación del atrio con el subatrio 
desprovisto de espínulas. 

Coloración general blanquecina pero son 
marrón claro: estigmas, papilas antenales, pal- 
pos maxilares y labiales, galeas e hileras; man- 
díbulas marrón oscuro. 


Cápsula cefálica 


Cabeza más alta que ancha (a = 1,35 mm, al = 
1,38 mm), con diversas punteaduras —de al- 
gunas de las cuales emergen sedas— en el 
clípeo, bordes laterales y parte superior. Ban- 
das parietales ausentes. Sutura coronal bas- 
tante larga (1 = 0,49 mm). Órbitas antenales 


circulares (d = 90 um); antenas bien desarro- 
lladas (1 = 55 pm; d = 20 um). 


Piezas bucales 


Mandíbulas (Fig. 6) (1 = 0,78 pm; a = 0,34 
um) bidentadas, alargadas, con 4-5 sedas di- 
minutas en la base. 

Labro (Fig. 3a) (a = 0,48 mm; al = 0,3 mm) 
con punteaduras y sedas (1 = 20 um) situadas 
sobre todo en la mitad inferior, en donde apa- 
recen también de 7-9 sensilas bien desarro- 
lladas. 

Epifaringe (Fig. 3b) espinulosa en su parte 
inferior, con varias sensilas bien desarrolladas 
en la zona medial. El centro de la epifaringe 
presenta un área desprovista de espínulas y 
papilas a cada lado, en donde aparecen de 5-7 
poros sensoriales de tamaño bastante menor 
que el de las sensilas. 

Maxilas (Fig. 6) con el área lacinial espinu- 
losa. Palpos maxilares (1 = 95 pm; a = 35 pm) 
mucho mayores que las galeas (1 = 40 qm; a = 
20 nm), que son, no obstante, bien conspicuas. 

Labio papiloso en su cara oral (Fig. 7), con 
las hileras (1 = 80 um; a = 40 jm) sobrepasan- 
do en longitud a los palpos labiales (1 = 65 um; 
a = 30 um). 


DISCUSIÓN 


Aunque la mayor parte de las especies del 
género Cerceris capturan coleópteros como 
presas, algunas especies propias de la Región 
Paleártica emplean himenópteros para ali- 
mentar a sus larvas. Sin embargo, las diferen- 
cias que existen entre ellas en lo relativo al 
comportamiento nidificador son mínimas, 
siendo éste, por lo general, muy constante (Al- 
cock, 1974; Elliot et al., 1981; Evans, 1971; 
Evans y Rubink, 1978). Esta constancia viene a 
ser confirmada, una vez más, por el comporta- 
miento observado en C. bicincta y C. sabulosa, 
muy similar al del resto de las especies del 
género estudiadas hasta el momento. Á este 
respecto cabe aclarar que C. sabulosa, como la 
mayor parte de las especies del género, deja 
durante el aprovisionamiento las presas en la 
galería, rodeadas por arena suelta, para trans- 
ferirlas posteriormente a la celda; no parece, 
pues, que practique cierres internos de la cel- 
da activa, tal como señaló Ferton (1910), quien 


Asís et al.: Nidificación de dos especies de Cerceris 9 


Figuras 2-7: Larva madura de C. bicincta: 2. Vista lateral; 3(a). Labro; 3(b). Epifaringe; 4. Tegumento (e = 20 pm); 5. 
Estigma (e = 10 um); 6. Piezas bucales, cara oral (e = 100 jm); 7. Labio, cara oral (e = 50 pm). 


10 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


probablemente confundió esta arena suelta 
que rodeaba a las presas con un cierre interno. 


Las observaciones realizadas sobre C. bicinc- 
ta confirman algunos aspectos ya dados a co- 
nocer por Tsuneki (1965), como son la nidifi- 
cación en sustratos muy duros y el empleo de 
crisomélidos como presas. A los dos géneros 
citados por este autor como presas (Coptocep- 
hala y Lobidostomis), hay que añadir otros tres: 
Clytra, Cryptocephalus y Tituboea. A pesar de 
ello, €. bicincta parece mostrar una cierta espe- 
cificidad en la captura de presas, pertenecien- 
do todas las encontradas hasta el momento a 
géneros próximos. 


El porcentaje de parasitismo observado en 
C. bicincta (31% de las celdas estudiadas), es 
similar al encontrado por Kurczewski y Miller 
(1984) en Cerceris flavofasciata floridensis 
Banks, 1915. A tenor de los observado en 
otros Philanthinae (Evans y O'Neill, 1988), es- 
ta cifra es bastante elevada, aunque, tal y como 
demostraron Spofford et al. (1986) en otras 
especies de la familia, los porcentajes pueden 
fluctuar ampliamente entre distintas poblacio- 
nes de una misma especie, según los enemigos 
naturales que aparezcan en cada área de nidi- 
ficación y las estrategias antiparasitarias desa- 
rrolladas por cada especie. 


AGRADECIMIENTOS 


Queremos expresar nuestro agradecimiento a 
S. Doguet por la identificación de los crisomé- 
lidos, así como a J. Alcock (Arizona State Uni- 
versity, USA) por la revisión del manuscrito 
original. El estudio fue realizado con la ayuda 
de la Conselleria de Cultura, Educació i Cién- 
cia de la Generalitat Valenciana y del proyecto 
Fauna Ibérica 1 (PB 87-0397). 


LITERATURA CITADA 


ALCOCK, J. 1974. The nesting behaviour of Cerceris simplex 
macrosticta (Hymenoptera: Sphecidae). J. nat. Hist., 8: 
645-652. 

BoHarT, R.M., MENKE, A.S. 1976. Sphecid wasps of the 
world. A generic revision. University of California 
Press, Berkeley, 695 pp. 

ByERs, G.W. 1978. Nests, prey, behavior and develop- 
ment of Cerceris halone (Hymenoptera: Sphecidae). J. 
Kans. Entomol. Soc., 51(4): 818-831. 

ELtiorr, N.B., ELLIOTT, W.M., SaLBERT, P. 1981. Nesting 
behavior of Cerceris zonata (Hymenoptera: Philanthi- 
dae). Ann. Entomol. Soc. Am., 74: 127-129. 

Evans, H.E. 1971. Observations on the nesting behavior 
of wasps of the tribe Cercerini. J. Kans. Entomol. Soc., 
44(4): 500-523. 

Evans, H.E., O'NeiLL, K.M. 1988. The natural history 
and behavior of North American beewolves. Cornell 
University Press. Ithaca, N.Y. 278 pp. 

Evans, H.E., RuBink, W.L. 1978. Observations on the 
prey and nests of seven species of Cerceris (Hymenop- 
tera: Sphecidae). Great Bas. Nat., 38(1): 59-63. 

FerTON, C. 1905. Notes sur P'instinct des hyménoptéres 
melliféres et ravisseurs 111. Ann. Soc. Entomol. Fr., 74: 
56-101. 

FERTON, C. 1910. Notes détachées sur l'instinct des hymé- 
noptéres melliféres et ravisseurs IV. Ann. Soc. Ento- 
mol. Fr., 79: 145-178. 

Gess, F.W. 1980. Prey and nesting sites of some sympatric 
species of Cerceris with a review and discussion of the 
prey diversity ofthe genus. Ann. Cape Prov. Mus. (nat. 
Hist.), 13(7): 85-93. 

GRANDI, G. 1929. Contributi alla conoscenza biologica e 
morfologica degli imenotteri melliferi e predatori VII. 
Bol. Lab. Entomol. Bologna, 1: 258-326. 

KurczewsK1, F.E., MILLER, R.C. 1984. Observations on 
the nesting of three species of Cerceris (Hymenotera: 
Sphecidae). Fla. Entomol., 67(1): 146-155. 

SPOFFORD, M.G., KURCZEWSKI, F.E., PecKHaM, D.J. 1986. 
Cleptoparasitism of Tachysphex termmnatus (Hymenop- 
tera: Sphecidae) by three species of Miltogrammini 
(Diptera: Sarcophagidae). Ann. Entomol. Soc. Am., 
79: 350-358. 

Tsunekt, K. 1965. The biology of east-asiatic Cerceris 
(Hym., Sphecidae) with special reference to the pecu- 
liar social relationships and return to the nest in Cerce- 
ris hortivaga Kohl. Etizenia, 9: 1-46. 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 11-15 


ON SOME POORLY KNOWN, MISIDENTIFIED AND MISLABELLED 
CHILEAN CHRYSOMELIDAE (COLEOPTERA) 


INGOLF S. AsKEVvOLD! 


ABSTRACT 


Some species of Chilean Chrysometilidae have apparently been described from mislabelled specimens, 
from accidental introductions, or from adventitious specimens of Argentinian or Peruvian species. 
Hypolampsis melanotus Clark and Stethispa chilensis Pic are believed to be based on non-established taxa 
that have been described from Argentina or Peru. Uroplata chilensis Pic was probably based on an 
unestablished adventitious specimen from Argentina, and is placed as junior synonym of U. nigritarsis 
Weise. Blepharida chiliensis Baly was probably based on a mislabelled specimen and is reduced to 
synonymy of the Nearctic species, B. rhois (Forster). Phaedon rubripes Philippiand Philippi was based on 
a mislabelled specimen or unestablished accidental introduction, and is placed as a junior synonym of 
Gastrophysa polygoni (Linnaeus). Megalostomis gazella Lacordaire, Calligrapha curvilinea Stál, Disonycha 
copulata Germar, Disonycha bicarinata Boheman, Disonycha argentinensis Jacoby and Diabrotica viridula 
(Fab.) are not confirmed to have been collected in Chile and should be removed from faunal lists. 
Xanthogaleruca luteola (Múller) is recorded from Chile for the first time, but is not verified as 
established. 


RESUMEN 


Algunas especies chilenas de Chrysomelidae aparentemente fueron descritas en base a especímenes 
con etiquetas de procedencia incorrectas, especímenes introducidos accidentalmente, o en base a 
especímenes advenedizos de especies argentinas o peruanas. Se cree que Hypolampsis melanotus Clark y 
Stethispa chilensis Pic fueron basadas en taxa no establecidas que también pueden haber sido descritas de 
Argentina o Perú. Uroplata chilensis Pic probablemente fue basada en un ejemplar advenedizo de 
Argentina no establecido, y se sinonimiza con U. nagritarsis Weise. Blepharida chilensis Baly probable- 
mente fue basada en un ejemplar con etiqueta de procedencia incorrecta, y se sinonimiza con la especie 
neártica B. rhois (Forster). Phaedon rubripes Philippi y Philippi fue basada en un ejemplar con etiqueta 
de procedencia incorrecta o introducido accidentalmente y no establecido, y se sinonimiza con 
Gastrophysa polygoni (Linnaeus). No se ha podido confirmar que Megalostomis gazella Lacordaire, 
Calligrapha curvilinea Stál, Disonycha copulata Germar, Disonycha bicarmata Boheman, Disonycha argenti- 
nensis Jacoby y Diabrotica viridula (Fab.) hayan sido colectadas en Chile, por lo que deberían removerse 
de las listas faunísticas de este país. Se registra por primera vez la presencia en Chile de Xanthogaleruca 
luteola (Múller), pero no se ha podido confirmar si esta especie ha logrado establecerse. 


INTRODUCTION 


During investigation of taxonomic problem 
concerning the Chrysomelidae of Chile, type 
specimens were examined of some taxa that 
have not been collected in Chile subsequent to 
original description. The Chilean chrysomelid 
fauna is highly endemic and geographically 
isolated from the remainder of the Neotropi- 


'Entomology-Biological Control, Division of Agricul- 
tural Sciences, Florida A 8: M University, Tallahassee, FL. 
32307, USA. (Received: 26 October 1990. Accepted: 26 


June 1991). 


cal fauna (O'Brien, 1971), but it is not uncom- 
mon for specimens of various non-Chilean 
taxa to be found in Chile. For example, I have 
examined Chilean specimens of Spintherophyta 
Dejean, Systena Chevrolat and other genera 
which seem to be more widespread Neotro- 
pical species that have succeeded in arriving in 
Chile but did not become established. In other 
cases, the type specimen(s) of certain species 
described from Chile clearly represent misla- 
belled specimens because they are specimens 
of neartic or Palaeartic species that have not 
otherwise been collected in Chile. Some other 
species have been listed in catalogues as occu- 


12 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


rring in Chile, but have not been collected 
there, as evidenced by lack of such specimens 
in collections examined to date. 

The present paper details the taxonomic 
status of species that have been incorrectly 
recorded from Chile, that have been descri- 
bed from mislabelled specimens, or that have 
been described from specimens that probably 
occurred adventitiously in Chile and are not a 
constituent of the endemic fauna. Í use the 
term adventitious to mean individuals that ha- 
ve, by some unknown means, been transpor- 
ted into Chile from neighbouring countries by 
prevailing climatic conditions, or accidentally 
by humans. 

Lectotype designations are made where ap- 
propriate. Label data from type specimens are 
recorded here verbatim: */” is stated to indicate 
different labels borne by the type. Codens re- 
fer to collections in which specimens are pre- 
served (7.e. Chill MNHN, BMNH, MCZ, are 
specified in acknowledgements). Taxa repor- 
ted are detailed by subfamily. 


Clytrinae 


1. Blanchard (1851) figured and provided 
a description of Megalostomis gazella La- 
cordaire, stating this to be a species so 
widespread in South America that it pro- 
bably would be found in Chile also. Ho- 
wever, no species of Clytrinae, save two 
in the genus Dachrys, are known to occur 
in Chile. This species, M. gazella, must 
therefore be deleted from catalogues of 
Chilean Coleoptera (e.g. Blackwelder, 
1946) and faunal treatments (e.g. Peña, 
1988) that include it. 


Chrysomelinae 


2. The holotype of Phaedon rubripes Philip- 
pi and Philippi (1864:390) was exami- 
ned, and found to belong to the Holarc- 
tic genus Gastrophysa. 1t was compared 
with specimens of G. polygon: (Linnaeus) 
from Europe and North America, and 
found to be indistinguishable in detail 
from such specimens. No additional spe- 
cimens of any species of Gastrophysa have 
been found in collections of Chilean 
Chrysomelidae. Therefore, the species 
must be regarded as having been descri- 


bed from either an unestablished intro- 
duction or a mislabelled specimen. The 
holotype (sex undetermined) (Chil) 
bears the following label data: “1093. / 
Typus [red] / Phaedon rubripes Ph. 
p. 848 [pale blue, pencil] / Phaedon ru- 
bripes Ph. Typus! [label by Kuschel] / 
Chile M.N.H,N. Tipo N* 3113”. Th8 
specimen is not in good condition, mis- 
sing left antenna, left mid- and hindlegs, 
and right elytron loose on pin. 


3.  Calligrapha curvilinea Stál (1859:325) was 
described from Perú, and has been listed 
in catalogues as occurring in Chile. No 
species of this genus have been collected 
in Chile and 1 have examined no speci- 
mens of Chrysomelinae from Chile that 
agree with Stál's description; therefore, 
occurrence in Chile must be considered 
unsubstantiated and it should be deleted 
from faunal lists of Chile. I have not 
been able to examine the type of this 
species. 


4.  Chrysolina quadrigemina (Suffrian) and C. 
hyperici Forst. are species that have been 
introduced to various areas of North 
America for biological control of Ayperi- 
cum perforatum (e.g. Fields et al., 1988). 
They were introduced to Chile in 1950, 
but this is not widely known (Jerez pers. 
comm. 1989). 


Chrysolina quadrigemina has been collected at 
the following localities: Bio-Bío: Mulchén. 
Concepción: Chivilingo. Coquimbo (no speci- 
fic locality). Malleco: Termas de Manzanar; 15 
km. W. Victoria; 4 km. W. Victoria; Victoria. 
Nuble: Chillán, Las Trancas; Invernada; Re- 
cinto. Quillota: La Cruz. Talca: Alto Vilches. 
Valdivia: Huellelhue; Panguipulli. 


Chrysolina hyperici has not been widely collec- 
ted. Jerez (1989, pers. comm.) provided me 
with the following data, but I have not perso- 
nally examined any specimens: Talca, Altos 
de Vilches, diciembre 1970, T. Ramírez. 


Galerucinae 


No galerucines are confirmed to be endemic 
to Chile. Some specimens have been found in 
collections but with one exception these are 
old collections without specific locality data. 


| 


| 


Askevold: Mislabelled and poorly known Chilean Chrysomelidae 13 


5-6. Two species of Diabrotica have been lis- 


ted as occurring in Chile in catalogues 
(Blackwelder, 1946; Krysan and Smith, 
1987). Diabrotica viridana Baly 
(1886:443) was described from Chile. 
Smith and Lawrence (1967:141) place 
this species in the D. virgifera-Group. 
Krysan and Smith (1987) included D. v:- 
ridana in their key to species of the D. 
virgifera LeConte-Group but further 
treatment of the name was given because 
it is not a member of this species group 
(Krysan pers. comm. 1990). I suspect 
that it is not a species endemic to Chile 
and was probably described separately 
from another region of South America; 
it may have been described from a mis- 
labelled specimen. 


Krysan and Smith (1987:415) gave only 
' “Chili: (nfd)” [no further data] as distributio- 
nal data of D. viridula (Fab.) (based on a single 
| specimen, MCZ - Krysan, pers. comm. 1990). I 
think Diabrotica viridula should be deleted 
from lists of Chrysomelidae occurring in Con- 
tinental Chile? because the record is an 
' unsubstantiated, old occurrence or mislabe- 
¡ lled specimen. 


7. A single specimen of Xanthogaleruca lu- 
teola (Múller) was examined, labelled 
“Valparaíso, Ritoque, 17.APR.1982 
(Chil). This species typically uses Ulmus 
as a host plant, and has been introduced 
to North America. This single specimen 
may represent an introduction to Chile, 
but no additional specimens have been 
found. 


Alticinae 


| 8-10.Disonycha copulata Germar was described 


from Argentina, and listed in catalogues 
as occurring in Chile (e.g. Blackwelder, 
1946). Da Costa Lima (1954) listed no 
species occurring in Chile, but Blake 
(1955) gave “Chile: Germain” (no speci- 
fic location) for three species: D. bicarima- 
ta Boheman (p. 12), D. argentinensis Jaco- 


“Previously cited 4s present in Easter Island (Campos, 
L. y L. Peña. Rev. Chilena Ent., 7: 217-229, 1973); it 1s 
necessary confirm this record. 


by (p. 71), and D. copulata Germar 
(p. 68). Vogt et al. (1979) did not include 
Chile or any adjacent areas in the distri- 
bution of D. argentinensis. The type of D. 
copulata was not found in Berlin by Blake 
(1955:68), nor more recently (Hieke, 
pers. comm. 1989), and is presumed lost. 
No specimens of any Disonycha have been 
found that have been collected in Chile. 
It is possible that catalogues refer to an 
apparently undescribed species of Asp- 
haera which is similar in colour and ely- 
tral pattern to Disonycha species, and to 
the Chilean Kuschelina decorata (Blan- 
chard). 


11. Aypolampsis melanotus Clark (1860:233) 
was described from Chile. No other spe- 
cimens of this widespread New World 
genus have been collected in Chile and 1 
conclude that it was probably described 
from an adventitious specimen. The spe- 
cies should be deleted from catalogues, 
though it may well be a valid name for 
some other Neotropical species. The ho- 
lotype is preserved in BMHN: “67.56 / 
Type [red trim disc] / H. melanotus 
CIk.”. The specimen bears no locality da- 
ta, but Clark (1860) stated “Chili ex coll 
Chevrolat” and may simply have been 
mistaken. 


12. Blepharida chiliensis Baly (1865:432) was 
described from Chile. The holotype Y 
was examined, and was found to be 
indistinguishable in detail from North 
American (Illinois) specimens of Blepha- 
rida rhois (Forster) in my collection (this 
was confirmed by D. Furth, MCZ; pers. 
comm., 1991). The specimen should be 
considered as having been mislabelled, 
and is hereby reduced to a junior syno- 
nym of B. rhoiws. The holotype (BMN H) 
bears the following label data: “Type 
H.T. [red trim disc] / Baly Coll. / Blepha- 
rida chiliensis Baly Chili [bluish]”. 


Hispinae 


Pic (1933a8cb) described two hispines from 
Chile, Uroplata chilensis and Stethispa chilensis. 
The holotype of each species keys to these 
genera in Monrós and Viana (1947), and 


14 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


agrees in structure with descriptions of those 
genera presented by these authors. Thus, the- 
se taxa can be considered as correctly assigned 
to genus but their taxonomic validity must be 
doubted because no other specimens of the 


subfamily Hispinae have been collected in 
Chile. 


13. Uroplata chilensis Pic (1933a:293) keys to 
U. nigritarsis Weise in Monrós and Viana 
(1947), and agrees with the description 
and figure provided. It has not been pos- 
sible to examine the type of Weise's spe- 
cies, because it is not preserved in Berlín 
(Hieke, pers. comm. 1989). A few addi- 
tional specimens of this species have ap- 
parently been collected in Chile [labelled 
simply “Chile: Germain” (MCZ 3) and 
“Pampas: Germain” (MCZ 1). However, 
specimens apparently collected in Chile 
are very likely adventitious individuals 
from Argentina and not established. 
Uroplata chilensis Pic is hereby placed as 
junior synonym of U. nigritarsis Weise; it 
should be considered deleted from cata- 
logues of Chilean Coleoptera. 


The holotype (MNHN, sex undetermined) 
bears the following label data: “Chili / Uropla- 
ta probable / ou Octhispa / Museum Paris Coll. 
M. Pic [greenish, added by N. Berti / Uroplata 
chilensis n sp / Holotype Uroplata chilensis Pic 
[red, added by me)”. 


14. Stethispa chilensis Pic (1933b:36) keys, 
with difficulty, to this genus in Monrós 
and Viana (1947), but agrees well with 
the description of the genus. It does not 
correspond to either of the two species 
treated by these authors, and therefore 
is probably not an Argentinian species. 
Uhmann (1957) listed 18 species in the 
genus; it is possible that Pic's species co- 
rresponds to the Peruvian species S. bon- 
vouloiri Baly, but this has not been ascer- 
talned. 


The holotype (MNHN, sex undetermined) 
bears the following label data: “Chili [pencil] / 
type [yellowish] / type [red, added by N. Berti] 
/ Museum Paris Coll. M. Pic [greenish], chilen- 
sis n sp / Holotype Stethispa chilensis Pic [red, 
added by me]”. The specimen lacks the right 
apical elytral spine and right protarsus. 


ACKNOWLEDGEMENTS 

Mario Elgueta D., Sección de Entomología, 
Museo Nacional de Historia Natural, Casilla 
787, Santiago, Chile (Chil), Nicole Berti, La- 
boratorie d'Entomologie. Muséum National 
d'Histoire Naturelle, 45 Rue de Buffon, Paris 
75005 (MNHN). Sharon L. Shute, Depart- 
ment of Entomology, British Museum of Na- 
tural History, Cromwell Road, London SW” 
5BD (BMNH) and F. Hieke, Museum fúr Na- 
turkunde der Humboldt-Universitát zu Ber- 
lin, Invalidenstr. 43, 1040 Berlin are owed 
many thanks for their continued cooperation 
and loan of relevant types of Chilean taxa. 1 
thank Mauro Daccordi, Verona, for verifying 
determination of specimens of Chrysolina qua- 
drigemina, Viviane Jerez R. for providing some 
information concerning the species of Chryso- 
lina, D.G. Furth for verifying identification of 
B. chiliensis and G.J. Wibmer for useful com- 
ments on the manuscript and providing a: 
translation of the abstract. Work toward this 
publication has been supported in part by. 
NSERC grant N* A0428 to Dr. Robert E. 
Roughley, Department of Entomology, Uni- 
versity of Manitoba, Canada. 


REFERENCES CITED 


BaLy, J.S. 1865 xx1. Descriptions of new genera and spe- 
cies of Phytophaga. Trans. R. Ent. Soc. London Ser. 3, 
2(4): 427-440. 

BaLy, J.S. 1886. The Colombian species of the genus! 
Diabrotica, with descriptions of those hitherto uncha- 
racterized. Part 11. J. Linn. Soc. Zool., 19: 213-259. [not 
seen, cited in Krysan and Smith, 1987]. 

BLACKWELDER, R.E. 1946. Checklist of the Coleopterous: 
insects of Mexico, Central America, the West Indies, 
and South America. Part 4. Bull. U.S. Nat. Mus., 185, 
pp. 1111, 551-763. 

BLake, D.H. 1955. Revision of the vittate species of the 
chrysomelid genus Disonycha from the americas south 
of the United States. Proc. U.S. Nat. Mus., 104(3338): 
1-86. 

BLANCHARD, E. 1851. Tetramera u. Trimera. /n C. Gay, 
(Ed.), Historia fisica y politica de Chile, Zoología, 5: 
285-563. 

CLARK, H. 1860. Catalogue of the Halticidae in the collec- 
tion of the British Museum Physapodes and Oedipo- 
des Part 1. London. xii + 301 pp. + 9 plates. 

Da Costa Lima, A. 1954. Sobre algunas especies de Diso- 
nycha (Coleoptera, Alticinae). Rev. Bras. Ent., 1: 1-24. 

FieLbs, P.G., J.T. ARNASON and B.J.R. PHILOGENE. 1988. 
Distribution of Chrysolina spp. (Coleoptera: Chryso- 
melidae) in eastern Ontario, 18 years after their initial 
release. Can. Ent., 120: 937-938. 


Askevold: Mislabelled and poorly known Chilean Chrysomelidae 15 


Krysan, J.L. and R.F. SmITH. 1987. Systematics of the 
virgifera species group of Diabrotica (Coleoptera: Chry- 
somelidae: Galerucinae). Entomography, 5: 375-484. 

MONRÓS, F. and M.J. VIANa. 1947. Revisión sistemática de 
los Hispidae argentinos (Insecta, Coleop. Chrysome- 
loid.) An. Mus. Argent. Cienc. Nat., 42: 125-324 + 27 
plates. 

O'BrIEN, C.W. 1971. The biogeography of Chile through 
entomofaunal regions. Ent. News, 82: 197-207. 

Peña, L.E. 1988. Introduction a los insectos de Chile. 2* 
Edición, Editorial Universitaria, Santiago, 253 pp. 

PhiLipPPI, R.A. and F. PhiLippr. 1864. Beschreibung eini- 
ger neuen Chilenischen Káfer. Stett. Ent. Zeit., 25(10- 
12): 313-406. 

Pic, M. 1933a. Nouveaux Coléopteres américains. Bull. 
Soc. Ent. France, 30: 292-294. 

Pic, M. 1933b. Nouveautés diverses. Mélange Exot.-Ent., 
62: 1-36. 


SmiTH, R.F. and J.L. Lawrence. 1967. Clarification of the 
status of the type specimens of Diabroticites (Coleopte- 
ra, Chrysomelidae, Galerucinae). University of Cali- 
fornia Press, Berkeley and Los Angeles. ii + 174 pp. 


STÁL, C. 1859. Bidrag till kinnedomen om Amerikas 
Chrysomeliner. Ofversigt af Kongl. Vetenskaps Aka- 
demiens Forhandlingar, 16: 305-326. 


UHmannN, E. 1957. Chrysomelidae: Hispinae. Hispinae 
Americanae. Coleopterorum Catalogus. Supplemen- 
ta, Pars 35, Fasc. 1, W.D. Junk, Ed., 's-Gravenhage, vil 
> a 


Vocr, G.B., J.U. MCGUIRE, Jr., and A.D. CusHman. 1979. 
Probable evolution and morphological variation in 
South American Disonychine flea beetles (Coleoptera: 
Chrysomelidae) and their Amaranthaceous hosts. US- 
DA. Tech. Bull. 1593: 1-xiv, 1-148. 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 17-27 


THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA): 


KEYS FOR IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECAE AND 


OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS. 
VII.5. SUBFAMILY STENOPOGONINAE HULL - TRIBE TILLOBROMINI, 


WITH DESCRIPTIONS OF THREE NEW GENERA AND TWO NEW SPECIES AND 


A CATALOGUE OF THE NEOTROPICAL SPECIES' 


JorGE N. ArTIGAS” Y NELSON PAPAVERO” 


ABSTRACT 


A key for the identification of the 7 genera of American Tillobromini (Asilidae, Stenopogoninae), with 
illustrations of female spermathecae and other morphological details, is given. The following new taxa 
are described: Grajahua lopes:, gen. n., sp. n. (type-locality: Brazil, Rio de Janeiro, Rio de Janeiro 
(Grajaú); Scylaticina tucumana, gen. n., sp. n. (type-locality: Argentina, “Tucuman, San Pedro de 
Colalao); and Scylaticodes, gen. n. (type-species, Dasypogon chilensis Macquart, 1850). A catalogue of the 
neotropical species, with several new combinations, is added. 


Keywords: Insecta. Taxonomy. America. Key. Asilidae. Stenopogoninae. Tillobromini. 


RESUMEN 


Se presenta una clave para la identificación de los 7 géneros americanos de Tillobromini (Diptera, 
Asilidae, Stenopogoninae), con ilustraciones de espermatecas y otros detalles morfológicos. Los 
siguientes nuevos taxones son descritos: Grajahua lopesi, gen. n., sp. n. (localidad-tipo, Brasil, Rio de 
Janeiro, Rio de Janeiro (Grajaú), Scylaticina tucumana, gen. n., sp. n. (localidad-tipo, Argentina, 
Tucuman, San Pedro de Colalao), y Scylaticodes, gen. n. (especie-tipo, Dasypogon chilensis Macquart, 
1850). Se agrega un catálogo de las especies neotropicales, con varias nuevas combinaciones. 


INTRODUCTION 


This 1s part of a series of papers dealing with 
the American genera of Asilidae, with illustra- 
tion of spermathecae and other morphologi- 
cal details. Previous instalments of this series 
comprise the following parts: I (Key to subfa- 
milies, subfamily Leptogastrinae): Gayana 


'This research was supported by the Fundacáo de 
Amparo a Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (Grants 85/ 
1772-5, 86/3327-1 and 87/3170-8). : 

Universidad de Concepción, Facultad de Ciencias 
Biológicas y de Recursos Naturales, Departamento de 
Zoología (MZUC), Casilla 2407, Concepción-Chile 
(Proyecto Dirección de Investigación, U. de Concepción, 
N” 203812). 

Museu de Zoologia 8c Instituto de Estudos Avanca- 
dos, Universidade de Sáo Paulo. Pesquisador do Conselho 
Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico 
(CN Pq, Proc. N” 30.0994/79). 

(Recibido: 15 de enero de 1991. Aceptado: 25 de abril 
de 1991.) 


Zool. 52(1-2): 95-114, 1988; 11 (Dasypogoni- 
nae): Gayana Zool. 52(3-4): 199-260, 1988; IM 
(Trigonomiminae); Bol. Soc. Biol. Concep- 
cion 60: 35-41, 1988; IV (Laphriinae, except 
Atomosiini): Bol. Mus. Paraense Emilio Goel- 
di, Zool. 4(2): 211-255, 1989; V (Stichopogini- 
nae): Bol. Soc. Biol. Concepcion 61: 39-47, 
1990; VI (Laphriinae, Atomosiini): Gayana 
Zool. 55(1): 53-85, 1991; VII.1 (Stenopogoni- 
nae, key to tribes): Gayana Zool. 55(2): en 
prensa; VII.2. (Stenopoginae, tribes Acrony- 
chini, Bathypogonini, Ceraturgini): Gayana 
Zool. 55(3): en prensa; VII.3 (Stenopogoni- 
nae, tribes Dioctriini, Echthopodini): Gayana 
Zool. 55(4): en prensa; VII.4 (Stenopogoni- 
nae, Enigmomorphini): Bol. Soc. Biol. Con- 
cepcion 62: en prensa. The materials studied 
in this paper belong to the collections of the 
Museu de Zoologia da Universidade de Sao 
Paulo and to the Departamento de Zoologia 
de la Universidad de Concepcion. The metho- 


18 


Rev. Chilena Ent. 19. 1991 


dology employed in the dissection and preser- 
vation of the male terminalia, female spermat- 


hecae and other morphological parts is the 


some employed by Artigas (1971). 


Tribe TILLOBROMINI Artigas €e Papavero 


Key to the genera 


l. 


AU 


3(2). 


4(3). 


Slender, bare flies. Abdomen long and slender, 
narrower than thorax and coarctate (at least on 
second abdominal segment)). Mystax thin, in only 
one row, confined to oral margin (Figs. 1-2). Scute- 
llum bare of hairs and bristles. Proboscis tapering 
to the apex, as long as mystax, pointed apically and 
bent downwards (Fig. 1). Face parallel-sided 
(Fig. 2) Legs very long and slender (Fig. 4). (Brazil: 
Rod anco Grajahua, gen. n. 


More robust, pilose, or more or less bare flies. 
Abdomen more or less flattened, short and robust, 
almost as wide as thorax. Other combinations of 
TECOS 0 ae O alo lindo 2 


Mystax of variable shape, but always with mixed 
bristles and hairs. Anterior dorsocentral bristles, if 
present, mixed with more or less abundant, mode- 
rately long pile (South America) ............- 3 
Mystax consisting of very strong, stiff bristles, 
extending from oral margin to base of antennae. 
Dorsocentral bristles also very strong, beginning 
on the anterior slope of mesonotum. Thorax and 
head without pile, all bristles stiff and evident. 
Spermathecae a long, slender, coiled tube (Figs. 
5-6). (Western North America) ................ 
E AA Coleomya Wilcox 8e Martin, 1935) 


Face either evenly rounded or from slightly to mo- 
derately prominent, but never strongly gibbose 
and first flagellmere never as below ......... 4 
Face strongly gibbous and first flagellomere narro- 
wed on lower third or half and then suddenly ex- 
panded above middle (cf. Artigas, 1970: Figs. 87, 
101, 115). Male terminalia as in Artigas (1970: Figs. 
88, 90-91, 92-99, 100, 102-106, 107-114, 116-117, 
119-121, 122-126, 129). Spermatheca as in Artigas 
(1971: Figs. 46, 48, 50, 52, 53, 56): capsule elonga- 
te, somewhat thickened, coiled. (Peru, Bolivia, 
southern Brazil, Argentina, Chile) ............. 
A Tillobroma Hull, 1962, n. status 
Mystax occupying lower 2/3 of face or more (Figs. 
8-9). Spermathecae with more or less rounded cap- 
sul (ges O A eE Ed: 5 
Mystax thick but confined to oral margin and pro- 
boscis long and thick, longer than mystax (almost 
surpassing tip of atennae) (Fig. 7). Face produced 
at oral margin, forming a thich triangle in profile 
(Fig. 7). Spermathecae with more or less falciform 
elongate capsules (Artigas, 1971: Fig. 66). (Chile, 
ALEC e Euthrixius Artigas, 1971 
Proboscis much longer than mystax (Fig. 8). Face 
almost triangularly produced, in lateral view, on its 
lower 2/3 (Fig. 8). Male terminalia as in Artigas 
(1970: Figs. 152-153, 155-156, 157-158). Spermat- 


hecae as in Artigas (1971: Fig. 63). (Chile). ..... 
E A lO Ernie Seylaticodes, gen. n. 


Proboscis shorter than length of mystax (Fig. 9). 
BHacepnonastabove ie 6 
Cell m3 closed, with a long petiole. Face with a 
flattened gibbosity occupying 4/5 of its height, a 
shallow concavity between gibbosity and base of 
antennae. First flagellomere subequal in length to 
combined length of scape and pedicel. Spermathe- 
cae as in Figs. 10-11. (Peru) Zabrotica Hull, 1962 
Cell m3 open. Face more or less flat, only very 
gradually sloping from base of antennae to oral 
margin (Fig. 9). First flagellomere more or less twi- 
ce combined length of scape and pedicel. Male 
terminalia and aedeagus as in Figs. 12-16. Sper- 
mathecae as in Fig. 17. (Argentina: Tucuman) .. 
A a o Seylaticina, gen. n 


Genus Euthrixtus Artigas 


Euthrix Philippi, 1865: 690 (preocc. Melgen, 
1830). Type-species, Dasypogon venustus 
Philippi (Martin 8: Papavero, 1970: 17). 

Euthrixius Artigas, 1971: 22 (nom. nov. for 
Euthrix Philippi). Type-species, Dasypogon 
venustus Philippi (aut.). 


List of species: 


distinguendus (F. Lynch Arribálzaga) im E. 


Lynch Arribálzaga, 1881: 121 (Scylaticus). 
Type-locality: Argentina, Buenos Aires, 
Chacabuco. T'P lost. N. COMB. 

rufipes (Philippi), 1865: 691 (Dasypogon). Ty- 
pe-locality: “Chile”. Distr. Chile (Aconca- 
gua, Curico, Valparaiso). Ref. Artigas, 
1970: 178. (Figs. 159, 161-163, 451). NT 
DZUC. 
philippa Schiner, 1868: 163 (Scylaticus). Ty- 
pe-locality: “Chile”. TP WIEN. 
rubripes Bigot, 1878: 435 (Scylaticus). Type- 
locality: “Chile”. TP OXF. 


venustus (Philippi), 1865: 689 (Dasypogon). Ty- 


pe-locality: Chile, Santiago, Distr. Chile 
(Coquimbo, Santiago, Valparaiso). Ref. Ar- 
tigas, 1970. (Figs. 151, 160, 164, 4927). NT 
DZUC. 


Artigas € Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 19 


Figures 1-4: Grajahua lopest, gen. n., sp. n. 1, head, lateral view. 2, same, frontal view. 3, antenna. 4, hind leg. (scale in mm). 


Genus Grajahua gen. n. 


Face 1/4 width of head, frons of similar width. 
Internal margin of eyes nearly parallel. Upper 
half of face produced. Mystax reduced to a 
row of 8-10 bristles, restricted to oral margin. 
Frontal bristles absent; 2 ocellar bristles: post- 
ocular bristles short, scattered, forming a li- 
ne. Antennae implanted on upper 1/3 of 
head; pedicel slightly longer than scape; first 


flagellomere similar in length to combined 
length of scape and pedicel, wider on middle; 
second flagellomere minute, excavated dorsa- 
lly, with a spine on center. Proboscis short, 
bulbose at base, strongly tapered, apex acute, 
apical half gently curved down, reminiscent of 
the proboscis of Ancylorrhynchus Macquart. 
Palpi 2-segmented. 


20 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


Figures 5 £c 6: Coleomyia setigera (Cole). 5, situation of the spermathecae in the abdomen. 6, spermathecae (scale in mm). 


Artigas 8c Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 21 


Prosternum dissociated from proepister- 
num. Pronotum with a row of bristles similar 
to the postocellar ones. Mesonotum flat, shi- 
ning, glabrous; presutural dorsocentral bris- 
tles minute, 2-3 pairs of strong postsutural 
bristles; humerals absent; 1 supraalar, 1 post- 
alar and 1 postcallar. Disc of scutellum gla- 
¡ brous, no marginal scutellar bristles. No bris- 
tles on mesopleura. Anatergite bare. Katater- 
gite with a row of 5-7 long bristles. Thorax 
mostly glabrous and shining. 

Legs very long and slender, with minute 
fine hairs, a few fine bristles on tibiae and 
tarsl; basitarsus as long as remaining tarsome- 
res together. Claws fine, small, acute. Pulvillus 
reaching tip of claws. 

Wing with cell r, open; R¿ ends at wing 
apex, R; ends far below apex; anal cell open. 

Abdomen narrower than thorax, second 
segment coarctate, the abdomen tapering 
from segment 6. Integument smooth, shining, 
with fine scattered minute hairs. Ovipositor 
with strong spines on acanthophorites. 

Male unknown. 


Type-species, Grajahua lopest sp. n. 


Grajahua lopesi sp. n. 


Total length, 13 mm; wing length, 13 mm; 
wing width, 3.5 mm. 


Female. Face shining light-brown on upper 
half, lower half covered with silvery micropi- 
losity which extends partially along anterior 
border of eyes until vertex. Ocellar triangle 
darker, ocelli white; the 2 ocellar bristles 
black. Mystax with yellow bristles. Postocular 
bristles black. Pedicel with a few short black 
bristles; first flagellomere similar in color to 
scape and pedicel, with a long black area on 
dorsal basal half where there are short black 
bristles directed forwards; second flagellome- 
re 1/10 length of first, with a minute black 
spine on center of dorsal excavation. 
Pronotum brownish, glabrous, with a row 
of short black bristles. Mesonotum shining- 
brown, glabrous, dorsocentrals yellow, minu- 
te, except for 2-3 pairs of postsuturals, which 
are slightly longer; along the dorsocentrals 
line there exists silvery micropubescence, for- 
ming 2 narrow silver lines along mesonotum. 
Humeral callus shining, bare, Supraalar, post- 


alar and postcallar bristles black. Most pleural 
segments with silvery micropubescence on 
posterior border. Bristles of katatergite ye- 
llow. Scutellum shining-brown, bare. 

Legs lighter than body, covered with short 
yellow hairs; anterior tibia and basitarsus dar- 
Ker then remaining legs. Front and hind tarso- 
meres 2-5 whitish, with whitish fine short 
hairs. Claws black on apical 2/3, pulvilli whi- 
tish. 

Wing hyaline, except on costal, subscostal, 
and ry cells (the latter only at base), and apical 
1/4, which are dark brown. 

Abdomen brown. 

Holotype Y. Brazil, Rio de Janetro: Rio de 
Janeiro (Grahaú), 10.vi11.1941 (H.S. Lopes), in 
the MZUSP. 

The specific name represents a homage to 
Prof. Dr. Hugo de Souza Lopez, who collected 
this interesting fly. 


Genus Scylaticina gen. n. 


Face 1/4 width of head, its sides nearly para- 
llel. Frons wider than face. Facial gibbosity 
occupying most of face. Frontal bristles simi- 
lar to the ocellar ones. Vertical and post- 
vertical bristles medium-sized. Antennae si- 
tuated on upper 1/4 of head; scape twice as 
long as pedicel, both with similar sized bristles; 
first flagellomere 2 times as long as scape plus 
pedicel, without strong hairs of bristles; se- 
cond flagellomere small, depressed, as long as 
wide, dorsaly excavated, with a minute spine 
on center. Proboscis short, cylindrical, abrup- 
tly depressed on apical 1/3. Palpi two- 
segmented, second segment pointed. Face in 
profile more or less flattened, only very gra- 
dually sloping from base of antennae to oral 
margin (Fig. 9), mystax occupying lower 2/3 
of face or more. 

Pronotal bristles similar to the postocular 
ones. Prosternum dissociated from proepis- 
ternum, bare. Mesonotum with scattered mi- 
nute hairs; presutural dorsocentral bristles 
short, indistinct, postsuturals longer, in 1-3 
pairs; no strong bristles on humeral callus, 1-2 
supraalars, 2-3 postalars, and 2-3 postcallar 
bristles. Disc of scutellum bare, 1-4 pairs of 
marginal scutellar bristles. No bristles on me- 
sopleura. Anepisternum bare. Katepisternum 
with bristles. 


22 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


E Ll 
LG % 
A 
SIDA 
TD 
TBEDA 
/ á A 
ed 
47 4 
7 
FAA 
ON 
/ 
y E 17 
Sa 
ES / 
CU 
| 
y) 
1 Ú 
( 


(=== 


Figures 7-9: Head, lateral view: 7, Euthrixtus sp. 8, Scylaticodes chilensis (Macquart), n. comb. 9, Seylaticina tucumana, gen. n., 


sp. n. (scale in mm). 


Artigas 8 Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 23 


Front leg with first tarsomere subequal in 
length to tarsomeres 2-4 together; tarsomeres 
2-4 subglobose. Claws acute. Pulvillus rea- 
ching 3/4 of claws. 

Wing with cell r, open; R4 ends at wing 
apex; R, ends below apex; anal cell slightly 
open or closed at wing margin; cell m3 open. 

Abdomen as wide as mesonotum, cylindri- 
cal; 7 tergites visible in the male, 8 in females. 
Male terminalia rotated almost 1809; apandria 
divided, gonopods shorter than epandria; hy- 
pandrium free, shorther than gonopods, ter- 
minalia exposed in ventral view; aedeagus 
hard, apex simple, curved at tip (Figs. 12-16). 
Ovipositor with spines on acanthophorites. 
Spermatheca with hard elongated capsules, 
capsular ducts very fine (Fig. 17). 


Type-species, Scylaticina tucumana sp. n. 


Seylaticina tucumana Sp. n. 
Total length, 10-13 mm. 


Margins of face golden micropubescent; cen- 
ter shining black. Mystax black. Tip of pedicel 
and scape shining black, with short black bris- 
tles; first flagellomere bicolorous, mostly red- 
dish-brown on ventral half and black on dor- 
sum and apical half; second flagellomere mi- 
nute, dark, deppressed and excavated, with a 
short spine on center. Frontal, ocellar and 
postvertical bristles similar, black, with a few 
white bristles intermingled on postvertical 
area. Postocular area with abundant short 
black bristles all over. Proboscis shining black. 
Hairs of beard and proboscis wrinkled on api- 
cal half. 

Pronotum black, mostly covered with silve- 
ry and yellow micropubescence; pronotal bris- 
tles abundant, black, similar to the post- 
verticals. Propleura with abundant black bris- 
tles and hairs. Mesonotum black, with a broad 
line of golden micropubescence on sides, pos- 
teriorly to humeral callus, as well as on hume- 
ral callus. Disc of mesonotum with short, very 
fine, white, scattered hairs; dorsocentrals 
white, very short on presutural area, longer 
on postsutural; humeral callus with fine white 
hairs; supraalar, postalar and postcallar bris- 


tles white. Disc of scutellum bare, 2 pairs of 


long white marginal scutellar bristles. Meso- 
pleura black, with areas of golden micro- 


pubescence and fine white hairs. Anepis- 
ternum and mesepisternum bare, with golden 
micropubescence. Katepisternum with 7-9 
white bristles. 

Coxas covered with micropubescence and 
abundant white hairs. Legs shining black, 
hind tibia dark reddish-brown with fine white 
short hairs; bristles mostly fine, white. Tarsal 
bristles black. 

Wing brownish, darker on costal area; veins 
brownish. 

Abdomen dull black, with bands of golden 
micropubescence on posterior margin of ter- 
gites; on tergites 2-3 these posterior bands of 
pubescence extend forwards almost to middle 
of tergite. Hairs short, white, scattered on ter- 
gites 1-3, black on tergites 4-6; sides of tergites 
1-3 with abundant white hairs. 

Male terminalia black, with fine hairs. 


Female: similar to male. Legs lighter and with 
golden micropubescence more abundant on 
tergites 5-6; on tergite 5 often covering most 
of the tergite. Ovipositor shining black, spines 
on acanthophorites black. 


Holotype 3, Argentina, Tucuman: San Pedro 
Colalao, 11. 1949 (M. Arnau), in the IML. 

Paratypes: 9 3 and 13 2, same data as Ho- 
lotype; 1 $, same locality, no date (Dirings); 
1 2, same locality, Depto. Trancas, x11.1950 
(Arnau); and 1 3, Argentina, Tucuman: Taca- 
nas, 6.x11.1946 (Golbach). In IML, DZUC, 
MZUSP, MZUC. 


Genus Scylaticodes gen. n. 


Face 1/4 width of head, wider below than abo- 
ve. Frons wider than face at antennal level. 
Facial gibbosity well-developed, occupying ba- 
sal 3/4 of face; in profile almost triangularly 
produced on its lower 2/3 (Fig. 8). Mystax oc- 
cupying 2/3 or more of face. Lateral frontal 
bristles shorter than bristles of mystax, procli- 
nate, similar to ocellar bristles. Postocular 
bristles abundant, gently curved forward. An- 
tennae placed slightly over middle distance 
between oral margin and ocelar triangle; sca- 
pe and pedicel similar in length, first flagello- 
mere 1.5 times length of scape plus pedicel; 
second flagellomere minute, excavated, wita 
small spine on middle. Probuscis straight, cy- 


1991 


19, 


Chilena Ent. 


Rev. 


ES 


CO > 


000141 MEE 


NOA MANQU 
AMO 


UL 


Ñ 


situation of the spermathecae in the abdomen. 11, spermathecae (scale in mm). 


, 


Figures 10 £c 11: Zabrotica clarker Hull. 10 


Artigas 8 Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 25 


Figures 12-17: Scylaticina tucumana, gen. n., sp. n. 12-14, male terminalia, in lateral, ventral and dorsal views. 15-16, 
aedegus, in lateral and dorsal views. 17, spermathecae (scale in mm). 


lindrical. Palpus 2-segmented; if extended 
reaching middle of proboscis. 

Mesonotum slightly convex, covered with 
short, reclinate hairs; dorsocentral bristles 
present only postsuturally, long, similar to ot- 
her abundant bristles on postsutural area; 
supraalar, postalar, postcallar and marginal 
scutellar bristles also similar. Disc of scutellum 
bare; 2-3 pairs of marginal scutellars. Anepis- 
ternum bare. Katepisternum with long bris- 
tles. 

Legs similar in shape, hind pair larger. Ves- 


titure of legs similar. Claws acute, pulvilli rea- 
ching 3/4 of claws. 

Wing with Ra slightly recurrent, or not, en- 
ding before wing apex; R; ending below wing 
apex; cell m3 open; anal cell slightly open or 
almost closed at wing margin. 

Abdomen narrower than thorax, cylindri- 
cal, 7 segments visible in males, slightly tape- 
red after segment 5. Male terminalia straight 
to rotated 90%; epandrium separated into two 
plates; hypandrium free; aedeagus simple, 
sigma-shaped, with a simple apex (Artigas, 


26 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


1971: Fig. 64). Ovipositor with strong spines 
on acanthophorites. Spermatheca with 3 glo- 
bose capsules at the end of fine ducts (Artigas, 
971 ig 63): 


Type-species, Dasypogon, chilensis Macquart, 
1850 


List of species: 


carrascor (Artigas), 1974: 5, Figs. 1-10 (Scylata- 
cus). Type-locality: Peru, Cuzco, Urubam- 
ba. Distr. Peru (Cuzco, Puno), Chile (Arica). 
HT DZUC. N. COMB. 


chilensis (Macquart), 1850: 48 (Dasypogon). Y y- 
pe-locality: “Chile”. Distr. Chile (Coquim- 
bo, O'Higgins, Santiago). Ref. Artigas, 
(9708 12 (Mes. lá, 12 015 1 E 00) 
TP MNHNP. N. COMB. 
tricolor Philippi, 1865: 688 (Dasypogon). Yy- 
pe-locality: Chile, Colchagua. TP. SANT. 

cuneigaster (Artigas), 1970: 174, Figs. 150, 153, 
156, 429 (Scylaticus). Type-locality: Chile, 
Atacama, Carrizal Bajo, Quebrada Algodo- 
nes. Distr. Chile (Atacama). HT DZUC. N. 
COMB. 

lugens (Philippi), 1865: 689 (Dasypogon). Type- 
locality: Chile, Colchagua. Distr. Chile 
(Santiago, Talca, Valparaiso). Ref. Artigas, 
1070 170, ¡Mes ELL 0 IN, 
DZUC. 


Genus Tillobroma Hull 


Clavator Philippi, 1865: 699 (preocc. Martens, 
1860). Type-species, punctipenms Philippi 
(Hull, 1962: 152). 

Hypenetes, subg. Tillobroma Hull, 1962: 154. 
Type-species, Clavator punctipennis Philippi 
(Orig. des.). 


List of species: 


asiliformis (Wulp), 1882: 101 (Hypenetes). Ty- 
pe-locality: “Argentina”. N. COMB. 

critesi (Artigas), 1970: 128, Figs. 92, 93, 95, 97, 
428 (Hypenetes). Type-locality: Chile, Ay- 
sen, Balmaceda, Distr. Chile (Arauco), Ay- 
sen, Bio-Bio, Cautin, Curico, Linares, Ma- 
lleco, Nuble, Valdivia). HT DZUC. N. 
COMB. 

davidsoni (Artigas), 1970: 130, Figs. 94, 96, 98, 
99, 420 (Hypenetes). Type-locality: Chile, 
Cauquenes. Distr. Chile (Concepción. Curi- 


fucosus (Artigas), 1970: 134, Figs. 102, 106, 


fulvicornis (Macquart), 1846: 195 (1846:67), 


có, Linares, Maule, Nuble, O'Higgins, San- 
tiago, Valparaíso). HT DZUC. N. COMB. 
digitatus (Artigas), 1970: 132, Figs. 100, 101, 
103-105, 484 (Hypenetes). Type-locality: 
Chile, Lota-Coelemu. Distr. Chile (Arauco, 
Cautin, Concepcion, Malleco, Santiago, 
Valparaiso). HT DZUC. N. COMB. 


107, 109, 468 (Hypenetes). Type-locality: 
Chile, Cord. Nahuelbuta, Pichinahuel. 
Distr. Chile (Arauco, Nuble). HT DZUC. N. 
COMB. 


pl. 7, Fig. 6 (Dasypogon). Type-locality: 
“Brazil”. Distr. Peru, Brazil (Rio de Janeiro, 
Sáo Paulo, Santa Catarina). TP MNHNP. 
N. COMB. 

magellanicus (Artigas), 1970: 136, Figs. 108, 
110-112, 418 (Hypenetes). Type-locality: 
Chile, Magallanes, cerro Guido. Distr. Chi- 
le (Magallanes). HT DZUC. N. COMB. 

obtusus (Engel), 1929: 472 (Hypenetes). Type- 
locality: Bolivia, cordillera de Buenavista, s. 
of Cuevo. Distr. Peru, Bolivia, Brazil (Sáo 
Paulo, Parana), Argentina, N. COMB. 

punctipenmas (Philippi), 1865: 699, pl. 26, Figs. 
31,31a-b (Clavator). Type-locality: “Chile”. 
Distr. Chile (Arauco, Bio-Bio, Linares, Ma- 
lleco, Ñuble, Santiago), Argentina. NT 
DZUC. N. COMB. 

schineri (Artigas), 1970: 139, Figs. 118-123, 
125, 493 (Hypenetes). Type-locality: Chile, 
Rancagua. Distr. Chile (O'Higgins, Valpa- 
raliso). HT DZUC. N. COMB. 

valentine: (Artigas), 1970: 141, Figs. 124, 126, 
127, 129, 419 (Hypenetes). Type-locality: 
Chile, Coquimbo. Distr. Chile (Aconcagua, 
Coquimbo, Concepción, Nuble, O'Hig- 
gins). HT DZUC. N. COMB. 


Genus Zabrotica Hull 


Zabrotica Hull, 1958: 253. Type-species, clarkez 
Hull (orig. des.). 

clarkei Hull, 1958: 254. Type-locality: Peru, 
Oroya. TP USNM. 


Unplaced and unrecognized Tillobromini 


cruciger Hermann, 1921: 119 (Scylaticus). Ty- 
pe-locality: “Paraguay”. 


Artigas € Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 207 


nitidigaster Macquart, 1850: 373 (1850: 69) 
(Dasypogon). Type-locality: “Chile”. TP lost. 


(Placed in Seylaticus by Stuardo (1846: 81) 
and Hull (1962: 145)). 


INDEX 
(Synonyms in italics) 


asiliformis (Wulp), 1882 (Hypenetes), Tillobroma 26 


carrascol (Artigas), 1974 (Scylaticus), Scylaticodes 26 
chilensis (Macquart), 1850 (Dasypogon), Scylati- 


codes 26 
clarkei Hull, 1958, Zabrotica 26 
Clavator Philippi, 1865 26 
Coleomya Wilcox 8: Martin, 1935 18 
critesi (Artigas), 1970) (Hypenetes), Tillobroma 26 
cruciger Hermann, 1921 (Scylaticus), unplaced 

taxon 26 


cuneigaster (Artigas), 1970 (Scylaticus), Scylaticodes 26 


davidsoni (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26 
digitatus (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26 
distinguendus (F. Lynch Arribálzaga), 1881 (Scylati- 


cus), Euthrixius 18 
Euthrix Philippi, 1865 18 
Euthrixius Artigas, 1971 18 


fucosus (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26 
fulvicornis (Macquart), 1846 (Dasypogon), Tillo- 


lugens (Philippi), 1865 (Dasypogon), Scylaticodes 26 


magellanicus (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillo- 


broma 26 
nitidigaster Macquart, 1850 (Dasyvpogon), unplaced 

taxon 27) 
obtusus (Engel), 1930 (Hypenetes), Tillobroma 26 


philippu (Schiner), 1868 (Scylaticus), Euthrixius 18 
punctipennis (Philippi). 1865 (Clavator), Tillobroma. 26 


rubripes (Bigot), 1878 (Scylaticus), Euthrixius 18 
rufipes (Philippi), 1865 (Dasypogon), Euthrixius 18 
schineri (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26 
Scylaticina, gen. n. 24 
Scylaticodes, gen. n. 23 
Tillobroma Hull, 1962 96 
tricolor (Philippi), 1865 (Dasypogon), Scylaticodes 96 
tucumana, sp. n., Scylaticina. 23 


valentinei (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26 
venustus (Philippi), 1865 (Dasvpogon). Euthrixius 18 


broma 26 
, Zabrotica Hull, 1958 26 
Grajahua, gen. n. 19 
lopesi, sp. n., Grajahua 21 
REFERENCES 


ARTIGas, J.N. 1970. Los asílidos de Chile (Diptera- 
Asilidae). Gayana (Zool.), 17: 1-472, 504 figs. 

ARTIGAS, J.N. 1971. Las estructuras quitinizadas de la 
spermatheca y funda del pene de los asílidos y su valor 
sistemático a través del estudio por taxonomía numéri- 
ca. Gayana (Zool.), 18: 1-106, 138 figs. 

ARTIGAS, J.N. 1974. Scylaticus carrasco: n. sp. del Altiplano 
Chileno-Peruano (Diptera-Asilidae). Bol. Soc. Biol. 
Concepción, 48: 5-9, 10 figs. 

Bicor, J.M.F. 1878. Dipteres nouveaux ou peu connus. 
10" partie. XV. Tribu des Asilidi. Curies des Laphidae 
et Dasypogonidae. Ann. Soc. ent. Fr., (5) 88: 213-240, 
401-446. 

EncEL, E.O. 1930. Die Ausbeute der deutschen Chaco- 
Expedition 1925/1926. Asilidae (Diptera). Konowia, $: 
457-474, 8 figs. (1929). 

HERMANN, F. 1921. /n L. Zúrcher, Dipteren-Ausbeute aus 
Paraguay: Mydaiden und Asiliden. Arch. Natur- 
gesch., $7(A, 3): 118-122. 

HuLL, F.M. 1958. Some species and genera of the family 
Asilidae (Diptera). Proc. ent. Soc. Wash., 60(6): 251- 
Ze 

HuLt, F.M. 1962. Robber flies of the world. The genera of 
the family Asilidae. Smithson. Inst. Bull., 224(1): 1- 
432; (2): 433-907, 2536 figs. 


LyxcH ARRIBÁLZaAGa, E. 1881. Asilides argentinos. An. 
Soc. cient. argent., 11: 17-32, 112-128. 


MacQuarr, J. 1846. Dipteres exotiques nouveaux ou peu 
connus. (1%) Supplément. Mém. Soc. r. Sci. Agric. 
Arts. Lille (1845) 1844: 133-364, 20 pls. (Also sep. 
publ., pp. 5-283, 20 pls., Paris, 1846). 

MACQUART, J. 1850. Diptere exotiques nouveaux ou peu 
connus. 4* supplément. Mém. Soc. r. Sci., Agric. Arts. 
Lille 1849: 309-465, 466-479, pls. 1-14. (Also sep. 
publ., pp. 5-161, Paris, 1850). 

MarrTIN, C.H. 8 N. PapaverRo, 1970. Family Asilidae, in 
Museu de Zoologia, Universidade de Sáo Paulo, A 
catalogue of the Diptera of the Americas south of the 
United States 35b: 1-139. Sáo Paulo. 


PhiLipp1, R.A., 1865. Aufzáhlung der chilenischen Dipte- 
ren. Verh. zool. bot. Ges. Wien., 15: 595-782. 


SCHINER, LR., 1868. Diptera, pp. 1-388, 4 pls., ¿n Reise der 
ósterreichische Fregatte Novara um die Erde, Zoolo- 
gle, 2(1, B). Wien. 

STUARDO O., C. 1946. Catálogo de los dípteros de Chile, 
253 pp. Ministerio de Agricultura, Santiago. 


WuLr, F.M. van DER, 1882. Amerikaansche Diptera. 
Tijdschr. Ent., 25: 77-163, pls. 9-10. 


A Ry, Cie TAO ld 
| 7 o e EN pS 
MN) renales Unai dando 1M ss puio asada ol 
A A l cl 1Ldbs 
lil MAR rro 
d me ¿nl se pi ls vos 
A Y Med 1 ye m0 
cd il y pe 1 sal ar) Ho ES Jeldidd bb 


AR $ Ll AL 


O 


; e Jo soja y da 3 
Í Mn Ñ dl qui el 'n an h) 1d lo LITE 3 
j A DE A A 


ME 


4 DAA potislabn De eta ao 
| ' ¡YY ui Y AN Y , UN ' Ñ mE e m9 bol 
SU pg JE A nh. E 


ts pee JOA 2 ¿Lo ll sedal aba 
6d Ap yo nop cdo de Mo RE 
vn A e 0 


y 4 j 
AN 4 0x4 
ls ) 
10) Mi MA Ns yy 1 / Md á 
¿Ay atteó Lea] LENA vid emi. $eal 
e a CONAN «we e: Vina 74d ¡Hostigd, CL mbr 
A Mee h pos A A E e pro ¿ee Ido E 
as MS: da! Dri A OS 10 A 
7 sgh MA 5 BAN yv 0 IN el 
Ml Me al 4 En eel 00 


pu Ñ q NÓ 
A TAE 


pt 
dd! ' 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 29-38 


HERMETISMO EN SOCIEDADES DE CAMPONOTUS MOROSUS SMITH, 1858 
(HYMENOPTERA, FORMICIDAE) EN NIDOS ARTIFICIALES! 


Joaquín H. Ipinza ReGLA?, A. Lucero” y M.A. MORALES 


2 


RESUMEN 


Se estudia la influencia que presenta el olor social en interacciones de sociedades homoespecíficas de 


Camponotus morosus en nidos artificiales. 


ABSTRACT 


The influence of social odor in Camponotus morosus homospecific societies is studied in artificial nests. 


INTRODUCCIÓN 


Los mecanismos de reconocimiento colonial 
estarían sustentados por señales que pueden 
ser visuales, sonoras y táctiles-olfativas. Como 
resultado de diversos estudios, se sugiere que 
la comunicación interindividual entre las hor- 
migas está basada en marcadores químicos, 
detectables principalmente a nivel de las ante- 
nas, donde se encuentran los receptores del 
olfato (Isingrini € Lenoir, 1986; Jaisson, 
1985; Goetsch, 1983). Esto significaría que 
puede existir un gran número de olores colo- 
| niales y que los individuos poseerían gran ca- 
| pacidad para identificarlos. 

Entre miembros de diferentes colonias se 
[ manifiesta una hostilidad, cuya intensidad 
| puede variar de acuerdo a la especie. Wilson 
| (citado por Isingrini 8 Lenoir, 1986), distin- 
| gue dos situaciones en el reconocimiento en- 
| tre individuos: 


a) La intrusa luego de ser inspeccionada, es 
atacada y rechazada fuera del nido o 
muerta. 

b) O bien, provoca una respuesta que puede 
ser: 

1) Abierta aceptación pero discriminación 


'Financiado por FONDECYT, Proyecto: 90-1030. 

“Laboratorio de Zoología, Fac. Ciencias Veterinarias y 
Pecuarias, Universidad de Chile, Casilla 2-Correo 15, San- 
tiago-Chile. 

(Recibido: 14 de marzo de 1991. Aceptado: 21 de 
agosto de 1991.) 


en el ofrecimiento de alimentos hasta 
que adquiere el olor propio de la colonia. 
11) Aceptación, previa investigación minu- 
ciosa por parte de las integrantes de la 
colonia. Esta aceptación es progresiva. 


Es así como una sociedad de insectos se la 
considera hermética cuando los intrusos de 
otra sociedad homoespecífica son agredidos 
violentamente y a menudo sacrificados 
(Errard et al., 1990). 

Se pueden considerar una serie de factores 
que estarían influyendo en el grado de herme- 
tismo de una sociedad: número de reinas den- 
tro de una colonia (colonia monogyna o poli- 
gyna), edad de la intrusa, distancia geográfica 
entre los nidos, remoción del nido, entre 
otras. 

La diferenciación entre individuos de dife- 
rentes colonias de la misma especie está basa- 
da en estímulos olfatorios que actúan como 
una marca del individuo y de la cual partici- 
pan todos los integrantes de la misma colonia 
y, es variable entre nidos. Por lo tanto, cada 
miembro de la sociedad debe poseer “cri- 
terios” de reconocimiento que codifique las 
marcas caracterizantes de su nido (Jaisson, 
1985). 

De acuerdo a lo expuesto, podemos con- 
cluir que el grado de hermetismo de una socie- 
dad de insectos es un tema interesante de 
abordar. El presente trabajo propone estudiar 
este aspecto en Camponotus morosus Smith, 
1858, especie en la que se han realizado algu- 
nos trabajos que abordan aspectos biológicos 


30 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


de la especie en su ambiente natural (Ipinza, 
1985; Ipinza et al., 1986; Covarrubias el al., 
1987: Ipinza et al., 1990). 

El objetivo del presente trabajo será verift- 
car que el “olor social” juega un rol en el reco- 
nocimiento y grado de hermetismo entre colo- 
nias de la especie chilena Camponotus morosus 
Smith, 1858. 


MATERIAL Y MÉTODO 


Se recolectaron obreras de tres sociedades de 
Camponotus morosus con sus huevos. Cada una 
de ellas fue instalada en el laboratorio en su 
respectivo nido artificial. Éstos estructural- 
mente constan de un área de residencia (nido) 
de 9x9X9 cm; un dispositivo como fuente de 
humedad para el nido, de las mismas dimen- 
siones y un área de exploración o forrajeo de 
35x20Xx10 cm (Fresneau, 1980). 


Uno de los nidos fue denominado como 
Residentes (*R”) y los otros dos como Intrusas 
l e Intrusas 2 (“11” e “*12”). El nido Residente 
se dividió en dos grupos, a fin de que uno de 
ellos constituyera el grupo de control (nido 
“Rc”: 

En el nido “R” se instaló un sustrato constl- 
tuido por dos capas de papel para cromato- 
grafía Whathman N” 1, el que fue retirado al 
término de 21 días para obtener un extracto 
acuoso. Para ello, se cortó finamente el papel 
Whathman NC 1 y se introdujo en un recipien- 


te con 15 cc de suero fisiológico (Fresneau, 
1980). 


La dieta consistió en pulpa de manzana 
mezclada con miel (Dejean, 1986), además, 
como fuente proteica, trozos de pollo crudo. 


La temperatura ambiental se mantuvo en 
20 += 2%C y una humedad relativa de 45 a50%. 
Las 12 horas luz se proveyeron con tubos fluo- 
rescentes y difusores blancos (Cosen € Tous- 
saint, 1985). 


Se realizaron experiencias de transferen- 
cias y reintroducción que constaron de cuatro 
tratamientos cada una: 


— Olor propio 

— Baño en Butanol 

— Baño en extracto acuoso de la colonia Resi- 
dentes (“R”) 

— Baño en Butanol + extracto acuoso de la 
colonia Residentes (“R”). 


Así las hormigas de cada nido de Intrusas 
(“I,” e “L>”), sometidas a estos tratamientos, 
conformaron el Grupo 1 y Grupo 2, respecti- 
vamente. 


1. Experiencia de transferencia: Se tomaron 
diez hormigas de cada nido por tratamien- 
to, las que previa marcación (según técnica 
descrita por Fresneau € Charpin (1977), 
modificada) fueron introducidas indivi- 
dualmente en el nido “R”. Se observó las 
reacciones de las hormigas residentes du- 
rante dos minutos por ensayo. 

2. Experiencia de reintroducción: Consistió 
en retornar a la “intrusa” a su nido de ori- 
gen (“I;” o “I>”) inmediatamente después 
de los dos minutos de permanencia en el 
nido “R”. Se deseaba constatar si en la rein- 
troducción de la hormiga, ésta era aceptada 
por sus compañeras, o bien, atacada como 
una desconocida en su grupo de origen. 


Se hizo un seguimiento del tiempo (en segun- 
dos) de latencia de presentación de las unida- 
des conductuales siguientes: Exploración An- 
tenal (EA), Abertura Mandibular (AM), Aper- 
collamiento (A), Flexión de Abdomen (FA), 
Simulacro de Picadura (SP), Movimientos 
Bruscos de Retroceso (MBR), Lucha (L), 
Transporte de la Intrusa (1), Muerte de la 
Intrusa (M). (Parmigiani 8 Le Moli, 1987; 
Fresnau, 1980). 

Se definió tiempo de latencia de presenta- 
ción de las unidades conductuales descritas, al 
intervalo que transcurre a partir de la intro- 
ducción de la hormiga, hasta la ocurrencia de 
las unidades. 

Los ensayos se realizaron entre las 10:00 y 
12:00 y entre las 15:00 y 17:00 horas, que 
corresponden a los períodos de máxima activi- 
dad de la especie en su ambiente natural (Ipin- 
za et al., 1988). 

Con los resultados se realizó un análisis es- 
tadístico de la distribución de frecuencia de los 
eventos observados para cada tratamiento en 
la experiencia de transferencia y reintroduc- 
ción, respectivamente; descripción del tiempo 
(segundos) de latencia de presentación de ca- 
da unidad conductual, mediante el promedio 
(X) y desviación típica (s); prueba de Wilcoxon 
para verificar diferencias significativas en el 
tiempo de latencia de presentación de la con- 
ducta Exploración Antenal conjuntamente 


Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus Sl 
A AA A A A NÓ NS A e a e MA A EEE DOS 


con Abertura Mandibular (EA+AM) entre 
transferencias y reintroducción, para cada 
tratamiento; presentación ordinal de eventos 
durante el tiempo de observación y, por últi- 
mo, un análisis de var'anza de la variable tiem- 
po de latencia de presentación de la conducta 
Exploración Antenal conjuntamente con 
Abertura Mandibular (EA+AM), en la trans- 
¡| ferencia. 


RESULTADOS 


Es importante destacar que C. morosus, una 
especie de vida silvestre, al parecer se adapta 
satisfactoriamente al régimen de vida en cautl- 
verio, con alta probabilidad de ser mantenidas 
en nidos artificiales durante un largo período, 
posibilitando estudios a través del tiempo. 

Se observa (Tabla 1) que la mayor ocurren- 
cia de unidades conductuales se presenta en el 
tratamiento Olor Propio. Donde en ambos 
grupos se presentan con mayor frecuencia 
Apercollamiento (A) y Lucha (L) respecto de 
los demás tratamientos. 

Al analizar la distribución de frecuencia de 
unidades conductuales observadas en la trans- 


ferencia, se ve que Exploración Antenal 
conjuntamente con Abertura Mandibular 
(EA+AM) se presentan en las 80 observacio- 
nes realizadas. Le sigue la conducta de Aper- 
collamiento (A) con 41 observaciones y Lucha 
(L) con 31 observaciones. La unidad conduc- 
tual que se observó con menor frecuencia fue 
Transporte (1), con sólo 3 ocurrencias. 


Se desprende de la observación de los resul- 
tados obtenidos en la reintroducción (Tabla 
2), que la conducta que se presentó con mayor 
frecuencia por parte de las compañeras de 
nido, fue Exploración Antenal conjuntamente 
con Abertura Mandibular (EA+AM), seguido 
por las conductas Movimientos Bruscos de Re- 
troceso (MBR) y Exploración Antenal conjun- 
tamente con Flexión de Abdomen (EA+FA) 
con similar frecuencia de observación. La con- 
ducta menos frecuente fue Apercollamiento 
(A), con una observación; pudiéndose pensar 
que su presentación es accidental. 


Al comparar las Tablas 1 y 2, se observa que 
en la experiencia de transferencia se presenta 
un mayor número de unidades conductuales 
realizadas por las hormigas, que en la expe- 


TABLA 1 
NÚMERO DE CAMPONOTUS MOROSUS QUE PRESENTARON DISTINTAS UNIDADES CONDUCTUALES EN 
LOS TRATAMIENTOS DURANTE LA TRANSFERENCIA 


TRATAMIENTO UNIDAD CONDUCTUAL 

GRUPO 1 EA+AM MBR AM+SP EA+FA A L T M 
Olor Propio 10 — 1 — 9 8 = 

Butanol 10 pan 4 zo 5 6 A l 
Extracto Acuoso 10 3) — 5 2 — — 
Butanol + Extracto 10 15) =— 2 2 — 2 
Acuoso 

PROPORCIÓN 40/40 2/40 13/40 0/40 21/40 18/40 0/40 7/40 
GRUPO 2 

Olor propio 10 2 — — 8 9 — 2 
Butanol 10 1 6 = 3 3 3 ES 
Extracto Acuoso 10 l l — 4 AE 4 Ea 
Butanol + Extracto 10 3) 1 = 5 l = pa 
Acuoso 

PROPORCIÓN 40/40 7/40 8/40 0/40 20/40 13/40 3/40 2/40 
EA = Exploración Antenal A = Apercollamiento 

AM  = Abertura Mandibular L = Lucha 

MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso 0 = Transporte 

SB = Simulacro de Picadura M = Muerte 


FA Flexión de Abdomen 


32 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


TABLA 2 
NÚMERO DE CAMPONOTUS MOROSUS QUE PRESENTARON DISTINTAS UNIDADES CONDUCTUALES EN | 


LOS TRATAMIENTOS DURANTE LA REINTRODUCCIÓN 


TRATAMIENTO UNIDAD CONDUCTUAL 

GRUPO 1 EA+AM MBR AM+SP EA+FA A JE Tí M 
Olor Propio 5 = — — — — = _ 
Butanol 9 Eta > 3 es 7 BA per, 
Extracto Acuoso 10 ES = 3 = = 3 pe 
Butanol + Extracto 8 4 = == l — E EE 
Acuoso 

PROPORCIÓN 32/40 4/40 0/40 6/40 1/40 0/40 0/40 0/40 
GRUPO 2 

Olor propio 8 — = — = = == dE 
Butanol 9 in +14 an 2 pa ¡dla cda 
Extracto Acuoso 10 —= — ERA = Y ia poe 
Butanol + Extracto 10 4 AER 3 e pes Hey Ber 
Acuoso 

PROPORCIÓN 37/40 4/40 0/40 3/40 0/40 0/40 0/40 0/40 
EA  = Exploración Antenal A = Apercollamiento 

AM  = Abertura Mandibular IL = Lucha 

MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso T = Transporte 

SP = Simulacro de Picadura M = Muerte 


FA  = Flexión de Abdomen 


riencia de reintroducción. Las conductas Lu- 
cha (L), Muerte de la intrusa (M), Transporte 
de la intrusa (T) y Abertura Mandibular 
conjuntamente con Simulacro de Picadura 
(AM+SP) no se observan en las hormigas 
compañeras de nido de la “intrusa” frente a la 
reintroducción de ésta a su nido de origen. 
Por el contrario, Exploración Antenal conjun- 
tamente con Flexión del abdomen (EA+FA) 
no se observa en las experiencias de transfe- 
rencias aun cuando su ocurrencia en las expe- 
riencias de reintroducción es baja. 


Las unidades conductuales Exploración 
Antenal conjuntamente con Abertura Mandi- 
bular (EA+AM), son las únicas que se presen- 
taron tanto en las experiencias de transferen- 
cia como de reintroducción. 


Como se desprende del análisis del tiempo 
de latencia de presentación de las unidades 
conductuales (Tablas 3 al 6), Exploración An- 
tenal conjuntamente con Abertura Mandibu- 
lar (EA+AM) son las únicas conductas que se 
presentan tanto en las experiencias de transfe- 
rencias como en las de reintroducción. 


Al analizar la media (X), desviación típica 
(s) y rango de estas unidades conductuales 
para cada tratamiento, tanto en la transferen- 
cia como en la reintroducción de la “intrusa”, 
se ve que hay una gran variación en la presen- 
tación del tiempo de latencia. Sin embargo, 
resulta destacable el que en el tratamiento 
Olor Propio, los resultados para estas unida- 
des conductuales presentan una similitud re- 
lativa en ambos grupos, no así en los demás 
tratamientos, donde la disparidad es mani- 
fiesta. 


Al realizar una comparación del tiempo de 
latencia de presentación de Exploración Ante- 
nal conjuntamente con Abertura Mandibular 
(EA+ AM) entre tratamientos, tanto para 
transferencia como para reintroducción, no se 
encontraron diferencias significativas según la 
Prueba de Wilcoxon (Steel 8 Torrie, 1960). 


En la distribución de frecuencias de la pre- 
sentación ordinal de las unidades conductua- 
les durante el tiempo de observación (Tablas 7 
al 10), apreciamos que siempre las primeras 
en presentarse, tanto en la transferencia como 


Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus 33 


TABLA 3 
DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y 
REINTRODUCCION DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO OLOR PROPIO 


TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
o Unidad X s . Rango E Xx s Rango 
P Conduc. (sg) (sg) - (sg) (sg) (sg) (sg) 
EA+AM 14 19,5 2a 42 10 39,4 35,6 8 a 89 5 
1 MBR — — — A — = — * 
A 28,3 23,9 l10a 87 9 = = = * 
L 60,7 38,6 IDEAS 8 — = = * 
EA+AM 13,6 11,9 Sia 45 10 47,6 36,4 l a 88 8 
2 MBR 33 36,7 Ta 59 2 = = = * 
A 38 24,6 l0a 75 8 = = a * 
L 43,3 24,8 Ta 89 9 — = == * 
* no se presentó 
EA  = Exploración Antenal 
AM  = Abertura Mandibular 
MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso 
A = Apercollamiento 
L = Lucha 
5% = Media 
S = Desviación Típica 
n = Número de Individuos 
TABLA 4 
DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y 
REINTRODUCCIÓN DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO BAÑO EN BUTANOL 
TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
Grupo Unidad E Ss Rango ed X S Rango SS 
Conduc. (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) 
EA+AM 8,5 5,3 22 17 10 15 9,1 DEL] 9 
1 AM+SP 51,2 42,3 17a 110 4 = = to * 
A 47,6 20,7 La 77 5 — — — * 
16, 58 37 4a 91 6 = = = E 
EA+AM 17,6 9,5 ba 34 10 17,9 14,5 5a4l 9 
2 AMxSP 42,8 35,6 6a 95 6 = — a 
A 36,7 AD l9a 68 3 — — — E 
E 56,3 14,6 AZ 3 = — — * 
* no se presentó 
EA  = Exploración Antenal 
AM  = Abertura Mandibular 
SP = Simulacro de Picadura 
A = Apercollamiento 
L = Lucha 
X = Media 
S = Desviación Típica 
n = Número de Individuos 


34 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


TABLA 5 
DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y 
REINTRODUCCIÓN DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO BAÑO EN EXTRACTO ACUOSO 


TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
Grupo Unidad X s Rango A X s Rango a 
Conduc. (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) 
EA+AM 19,7 15,8 SADO 10 14,1 9 4 a 29 10 
1 AM+SP 43,3 35,1 40a 80 2 14,7 6,1 842) 3 
A 68,8 32 20a 95 5 = = E * 
L 50 67,8 2a 98 2 ES peeR ea * 
EA+AM 22D 26,5 VA 10 9,6 4,6 4a17 9 
2 AM+SP = = = * — a Ei k 
A 445 40,5 Za 95 4 = =z = * 
L = za = * =— = E * 
* no se presentó 
EA  = Exploración Antenal L = Lucha 
AM  = Abertura Mandibular X = Media 
FA = Flexión de Abdomen S = Desviación Típica 
A = Apercollamiento n = Número de Individuos 


TABLA 6 
DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y 
REINTRODUCCIÓN DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO BAÑO BUTANOL + EXTRACTO 


ACUOSO 
TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
ES Unidad X S Rango E X S Rango e 
Es Conduc. (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) 
EA+AM 15 9,4 HAIZO 10 10,6 9,3 4 a32 9 
1 AM+SP 63,4 18 36a 8l 5 —= = — ES 
EA+FA = —= = SS 13 5,7 9a17 2 
MBR =— =— == * 29,5 35,8 4 480 4 
A 20,5 12 l2a 29 2 — — = * 
IL, 92,5 2201 9la 94 2 = = = * 
EA+AM 16 13,5 6a 47 10 312 26,9 4a 89 10 
2 AM+SP = = == * Ea pan * 
EA+FA = — = * 51 26,6 23 a 716 3 
MBR 50 44,1 8a 9% 3 62,5 29,2 45 a 106 4 
A 57,4 30 21a 101 5 = — = * 
L q do ps * MES cu el * 
* no se presentó 
EA = Exploración Antenal L = Lucha 
AM  = Abertura Mandibular = Media 


02) 
"U 
Il 


Simulacro de Picadura 
MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso 
A = Apercollamiento 


Desviación Típica 
Número de Individuos 


503% 
1! 


E 


Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus 35 


TABLA 7 
DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACIÓN 
(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO OLOR PROPIO 


TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
ño Orden de Unidad E Unidad F E 
E Presentación E Conduc. ñ » Conduc. IES 
Primero 10 EA+AM 10/10 5 EA+AM 5/5 
1 Segundo y A SUIS — — p- 
Tercero 8 L IAS = = = 
Primero 10 EA+AM 9/10 8 EA+AM 8/8 
2 Segundo 10 A 6/10 = = EE 
Tercero 8 L 6/ 8 = = == 
EA - = Exploración Antenal A = Apercollamiento 
AM  = Abertura Mandibular L = Lucha 
TABLA 8 : 
DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL c 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACION 
(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO BAÑO EN BUTANOL 
TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
Grupo Orden de Unidad Frecuencia n Vin elo Frecuencia 
p Presentación Conduc. Conduc. 
Primero 10 EA+AM 10/10 9 EA+AM 9/9 
1 Segundo 10 A 5/10 = — = 
Tercero 5 IL O = — = 
Primero 10 EA+AM 10/10 9 EA+AM 9/9 
2 Segundo 8 AM+SP ES = = — 
Tercero 4 L 20 RA! — — — 
Cuarto 4 Ni IA — — — 
EA  = Exploración Antenal A = Apercollamiento 
AM  = Abertura Mandibular L = Lucha 
SP = Simulacro de Picadura ly = Transporte 


en la reintroducción, son Exploración Ante- 
nal conjuntamente con Abertura Mandibular 
(EA+ AM). 


Se observa en la experiencia de transferen- 
cia que sólo en el tratamiento Olor Propio se 
repiten en ambos grupos, en idéntico orden: 
Exploración Antenal con Abertura Mandibu- 
lar (EA+AM), Apercollamiento (A) y Lucha 
(L); mientras que en los otros tratamientos ello 
no se observa. Por otra parte, las mismas con- 
ductas y en el mismo orden, se presentan en el 


Grupo 1 en los distintos tratamientos, excepto 
en Baño Butanol + Extracto Acuoso, donde 
Apercollamiento (A) y Lucha (L) no se presen- 
tan, aunque sí se observa Abertura Mandibu- 
lar con Simulacro de Picadura (AM+SP), que 
aparece también en el Extracto Acuoso (en 
tercer lugar de presentación). 


En el análisis de la experiencia de reintro- 
ducción, en el tratamiento Baño Butanol + 
Extracto Acuoso, para el Grupo 1, es posible 
determinar más de una unidad conductual en 


Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


TABLA 9 
DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACIÓN 
(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO BANO EN EXTRACTO ACUOSO 


TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
Grupo Orden de Unidad Frecuencia n Dpidaa Frecuencia 
Presentación Conduc. Conduc. 
Primero 10 EA+AM 10/10 10 EA+AM 10/10 
l Segundo 7 A Y) Ss — ze 
Tercero 4 AM+SP 2/ 4 = — = 
IL, DN = => ue 
Primero 10 EA+AM 9/10 9 EA+AM 9/9 
2 Segundo 5 A 0) — = — 
EA  = Exploración Antenal SP = Simulacro de Picadura 
AM  = Abertura Mandibular L = Lucha 
A = Apercollamiento 
TABLA 10 
DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL 
DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACIÓN 
(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO BAÑO BUTANOL + EXTRACTO ACUOSO 
TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN 
ta Orden de Unidad F . A Unidad E . 
P Presentación Conduc. IA Conduc. E ado 
Primero 10 EA+AM 10/10 9 EA+AM 8/ 9 
1 Segundo 6 AM+SP SO 5 MBR 2) 5 
EA+FA 2 
Primero 10 EA+AM 10/10 10 EA+AM 10/10 
2 Segundo 9 A 5/9 7 MBR AY 
EA  = Exploración Antenal MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso 
AM  = Abertura Mandibular FA = Flexión Abdomen 
SP = Simulacro de Picadura A = Apercollamiento 


orden de presentación en el tiempo (Movi- 
mientos Bruscos de Retroceso (MBR) y Explo- 
ración Antenal acompañado de Flexión de 
Abdomen (EA+FA) se presentaron en segun- 
do lugar con igual frecuencia. 


Siendo Exploración Antenal conjuntamen- 
te con Abertura Mandibular (EA + AM) en la 
experiencia de transferencia, las únicas unida- 
des conductuales que por su frecuencia de 
presentación son analizables estadísticamente, 
no se obtuvieron, en el Análisis de Varianza, 
valores significativos para F (Tabla 11). 


TABLA 11 
RESULTADOS DEL ANÁLISIS DE VARIANZA, 
VALORES DE “F” PARA TIEMPO (SEGUNDOS) 
DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN DE 
EXPLORACIÓN ANTENAL CONJUNTAMENTE 
CON ABERTURA MANDIBULAR (EA+ AM), EN 
LAS EXPERIENCIAS DE TRANSFERENCIA 


Fuentes de Variación F Significación 
Entre Tratamientos 3,01 p > 0,05 
Entre Grupos 0,94 p > 0,05 
Interacción 

Grupo- Tratamiento 0,42 p > 0,05 


Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus 7) 


DISCUSION 


En las observaciones realizadas durante las 
experiencias de transferencias y reintroduc- 
ción, las unidades conductuales que se presen- 
tan por parte de las hormigas residentes, per- 
miten determinar que Camponotus morosus es 
una especie cuyas sociedades son herméticas 
frente a la introducción de una obrera de otra 
sociedad homoespecífica. 

Estas unidades conductuales, en general, 
concuerdan con las descritas en la literatura 
revisada (De Vroey 8c Pasteels, 1978; Goetsch, 
1983; Permigiani 8: Le Moli, 1987). Sin em- 
bargo, ellas se presentan en especies de hormi- 
gas más primitivas en su evolución que Campo- 
notus morosus. Un ejemplo de ello es la unidad 
conductual Flexión de Abdomen, comporta- 
miento que no presentan otros miembros del 
género Camponotus (Jaisson, comunicación 
personal). 


La agresiva reacción frente a la introduc- 
ción de una obrera que no pertenece a la colo- 
nia, demuestra una gran capacidad de los in- 
dividuos para reconocerse, identificando a los 
miembros de un mismo nido perfectamente. 

En el presente trabajo se comprobó que este 
reconocimiento se realiza en base a caracterís- 
ticas olorosas que serían propias y particulares 
para cada colonia. 

Se observó una diferencia (no significativa) 
en el tiempo de latencia de presentación de las 
unidades conductuales Exploración Antenal 
conjuntamente con Abertura Mandibular en- 
tre los tratamientos introducción con Olor 
Propio y Baño Butanol + Extracto Acuoso. A 
pesar que estadísticamente no fue demostra- 
do, esta diferencia entre los tratamientos que 
incluyen el Baño Butanol, concordarían con lo 
citado por Bonavita 8: Poveda (1970); Lenoir 
$ Provost (1986); Lenoir (1987); Errard e: 
Jallon (1987); Errard et al. (1989), referente a 
que el olor social está compuesto por hidrocar- 
buros que se encuentran en la cera cuticular 
de estos insectos; donde el Butanol actuaría 
como solvente de esta cera, dificultando el 
reconocimiento de la “intrusa” por parte de 
las “residentes”. 


Se debe destacar el hecho que las obreras se 
mantuvieron en el laboratorio durante cuatro 
meses previo a los ensayos, sin embargo, el 
“olor colonial” persistió como se verificó cuan- 


do se introdujeron al nido “Residentes” hor- 
migas del Grupo “Residentes control” siendo 
reconocidas y aceptadas por sus compañeras. 

Esta observación hace pensar que el origen 
del olor social en esta especie es endógeno, ya 
que si fuera exógeno (material del nido y/o 
alimento) la permanencia en un ambiente ho- 
mogéneo (el laboratorio) habría neutralizado 
las diferencias entre los nidos y no se manifes- 
tarían las reacciones de rechazo frente a la 
introducción de una hormiga “intrusa”. 

Otro aspecto que llamó la atención fue el 
hecho que las unidades conductuales Explo- 
ración Antenal y Abertura Mandibular (EA y 
AM) siempre se presentaron juntas y en pri- 
mer lugar. La razón de ello sería que estas 
conductas son básicas en el reconocimiento 
entre compañeras de nido. De hecho, como ya 
se ha visto, el olor es lo que permite la identifi- 
cación de los individuos y un rápido cepillado 
con las antenas facilita este reconocimiento. 
La abertura Mandibular sería parte inherente 
a esta conducta. 

Así como Exploración Antenal y Abertura 
Mandibular (EA y AM) serían componentes 
del repertorio de reconocimiento, Apercolla- 
miento (A) y Lucha (L) lo son del repertorio de 
rechazo cuando se detecta que la obrera no 
pertenece al nido. Es por ello que estas unida- 
des conductuales se presentan con mayor fre- 
cuencia en el tratamiento de transferencia con 
Olor Propio. 

Finalmente, frente a los resultados obteni- 
dos se crea la necesidad de realizar un estudio 
específico de la naturaleza y composición del 
“olor social” como un paso más para conocer 
el complejo mecanismo de reconocimiento en- 
tre compañeras de nido. Todo ello como parte 
de un enfoque sociobiológico en el estudio de 
las hormigas, específicamente de la especie 
Camponotus morosus. 


CONCLUSIONES 
Se concluye que: 


— Camponotus morosus es una especie herméti- 
ca frente a hormigas homoespecíficas per- 
tenecientes a otras sociedades. 

— Las unidades conductuales Exploración 
Antenal y Abertura Mandibular son las pri- 
meras en presentarse y además lo hacen en 
forma conjunta. 


38 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


— Exploración Antenal conjuntamente con 
Abertura Mandibular (EA+AM) serían la 
conducta básica de reconocimiento, ya que 
se presentaron con la mayor frecuencia en 
ambas experiencias. 

— Las unidades conductuales Apercollamien- 
to (A), Lucha (L) y Muerte (M), son parte 
del repertorio de manifestación violenta de 
rechazo frente a la presencia de una hormi- 
ga que no es reconocida como integrante 
del nido. 

—El baño en Butanol disolvería la capa de 
cera cuticular y con ello las sustancias quí- 
micas que componen el olor social, favore- 
ciendo la aceptación de la “intrusa” en el 
nido. 


AGRADECIMIENTOS 


Los autores agradecen el apoyo financiero 

brindado por FONDECYT (Proyecto 90-1030). 
Agradecemos también a la Sra. Margarita 

Azólas por mecanografiar el manuscrito. 


LITERATURA CITADA 


BONavira, A. 8: POVEDA, A. 1970. Mise en évidence d'une 
division du travail chez une fourmi primitive C.R. 
Acad. Sc. Paris, 270: 515-518 

CosEns, D. £e ToussalnT, N. 1985. An experimental study 
of the foraging strategy of the wood ant Formica aqualo- 
ma Animal Behav., 33: 541-552. 

COVARRUBIAS, R.; Fueyo, R. 8 Ipinza, J. 1987. Algunos 
factores ecológicos que influencian la distribución es- 
pacial de nidos de hormigas. Act. Entom. Chilena, 14: 
117-126. 

Dejean, A. 1986. Etude du comportement de prédation 
dans la Genre Strumigenys (Myrmicinae). Insectes so- 
ciaux, 33(4): 388-405. 

De VroExy, D. 8: PasTEELS, J.M. 1978. Agonistic behaviour 
of Myrmica rubra L Insectes Sociaux, 25: 247-265. 
ERRARD, C. €e JaLLON, J.M. 1987. An investigation of the 

development of the chemical factors in ants intra socie- 


ty recognition. Chemistry and Biology of social insects, 
Verlag J. Pepernv. Múnchen. 

ERRARD, C.; BAGNERES, A.G. 8 CLEMENT, J.L. 1989. Les 
signaux chimiques de la reconnaissance inter- 
specifique chez les fourmis. Act. Coll Insectes sociaux, 
5: 285-292. 

ERRARD, C.; VIENNE, C. 8£ CORBARA, B. 1990. Ouverture 
et cohabitation chez les fourmis: les sociétés mixtes. La 
Recherche, 21(222): 780-782. 

FRESNEAU, D. 1980. Fermeture des sociétes et marquage 
territorial chez des fourmis ponerines du genre Neopo- 
nera Biologie - Ecologie Mediterranée 7(3): 204-206. 

FRESNEAU, D. 8: CHARPIN, A. 1977. Une solution photo- 
grapfique au probleme du marquage individuelle des 
petites insectes. Ann. Soc. Entom. Fr., 13: 1-15. 

GorTscH, W. 1983. La vida social de las hormigas. Ed. 
Labor. 

GREZ, A.: SIMONETTL. J. 8: IPINzA, J. 1986. Hábitos alimen- 
ticios de Camponotus morosus (Formicidae) en Chile 
Central. Rev. Chilena Ent.. 13: 51-54. 

Ibixza, J. 1985. Formícidos en el contenido gástrico de 
Liolaemus monticola (Reptilia). Rev. Chilena Ent.. 12: 
165-168. 

IPINZA, J.; MORALEs, M.A.; LucERo, A.; PLa, P. 8c VaLEN= 
CcIa, L. 1986. Distribución espacial de Camponotus moro- 
sus (Smith, 1858), Formicidae, en un ambiente precor- 
dillerano de Chile Central. Bol. Soc. Biol. Concepción, 
17: 15-19. 

IPINZA, J.; COVARRUBIAS, B.; MORALES, M.A.; Maxx, Á.; 
MarTÍNEZz, J.; PLa, P. £ Rivera, A. 1988. Períodos de 
actividad de Camponotus morosus (Smith, 1858), Formi- 
cidae, en un ciclo anual. Medio Ambiente, 9(2): 57-64. 

IPINzA, J.; COVARRUBIAS, R. £ MORALES, M.A. 1990. Dis- 
tribución espacial de nidos de hormigas en un área 
precordillerana de Chile Central. Folia Ent. Mex., 79: 
163-174. 

IsinGRINI, M. € LeNOrR, A. 1986. La reconnaissance colo- 
niale chez les Hymenoptera sociaux. Ann. Biol., 25(3): 
219-254. 


Jarsson, P. 1985. Social behaviour. In G.A. Kerkut é L.I. 


Gilbert (Editors). Comprehensive Ins. Phys., Biochem. 
and Pharmc. 9: 673-694. Pergamon Press, Oxford. 

LenNOIR, A. 1987. Factors determining polyethism in social 
insects. Experientia Sappl. Behavioura. In social In- 
sects, 34: 219-240. 

PARMIGIANI, S. £e Le MoL1, F. 1987. Relationship between 
intra and interspecific aggresion: the case of Formica 
rufa group species. Ethological Perspect. In Social and 
Presocial arthropods, 36: 29-32. 

STEEL, R. TorRIE, J. 1960. Principles and procedures of 
Statistics. Mc. Graw-Hill. Book Company, New York. 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 39-43 


DESCRIPCIÓN DE LOS HUEVOS DE LOS FÁSMIDOS 
(PHASMATODEA: PSEUDOPHASMATIDAE) DE CHILE! 


ARIEL CAMOUSSEIGHT? e Isaías BUSTAMANTE 


RESUMEN 


Se estudian y describen comparativamente los huevos de los cuatro géneros de Phasmatodea presentes 
en Chile, incluyéndose por primera vez a Paraprisopus Redtenbacher, 1906, como constitutivo de la 
entomofauna regional. Se adscribe Xeropsis a la Tribu Bacunculini. 


ABSTRACT 


The eggs of the four genera of Phasmatodea known from Chile are studied and described 
comparatively, including Paraprisopus Redtenbacher, 1906, which is recorded for the first time for the 
regional entomofauna. Xeropsis is proposed as a member of the Tribe Bacunculini. 


INTRODUCCIÓN 


En estudios referentes a la macroestructura 
coriónica de los huevos de fásmidos, se ha 
establecido que la presencia combinada de dos 
formaciones características de ellos, el opércu- 
lo y la micropila, definirían el Orden. El 
opérculo, generalmente ubicado en el polo 
superior, consiste en una tapa que cierra la 
salida de la ninfa, la cual debe removerla du- 
rante su emergencia; puede o no poseer un 
asa O capítulo, de muy diversas formas y tama- 
ños. La micropila, ubicada en el costado dor- 
sal, en relieve, con una porción basal que re- 
cuerda a un receptáculo con su abertura diri- 
gida hacia el polo superior. Esta micropila es 
parte integral de la lámina micropilar que 
puede o no estar claramente delimitada exte- 
riormente, pero que por la cara interna del 
corion se presenta como una bien delineada 
zona blanca nacarada, con un pequeño orifi- 
cio en su extremo posterior o basal donde se 
insertarían los tubos micropilares. La lámina y 
muy especialmente los canales o tubos micro- 
pilares constituyen el único contacto entre el 
huevo y el medio externo; se ha postulado que 


'Resultado parcial del Proyecto FONDECYT 107-87. 

Mus. Nac. Hist. Nat. Secc. Entomología, Casilla 787. 
Santiago-Chile. 

(Recibido: 28 de mayo de 1991. Aceptado: 22 de julio 
de 1991.) 


a través de ellos se efectuaría intercambio ga- 
seoso y la fertilización; el nombre micropila 
hace mención justamente a esta última fun- 
ción. Sellick (1986), desde esta visión interna, 
estableció dos categorías de micropilas: cerra- 
das, cuando el punto de inserción de los cana- 
les micropilares queda completamente rodea- 
do por la lámina; y abiertas, al quedar un 
espacio entre dos porciones de ella, es decir no 
rodeando completamente el tubo micropilar. 
Los elementos señalados han permitido di- 
ferenciar muy bien los géneros. Aún más, ca- 
racterísticas de la superficie coriónica: rugosi- 
dades, vellosidades, etc., en su ultraestructura 
permiten diferenciar taxa de nivel especie. 
En el presente trabajo se describen los hue- 
vos de los cuatro géneros presentes en el país, 
basados en el estudio de las especies Agatheme- 
ra crassa, A. elegans, A. millipunctata; Xeropsis 
crassicornis; Bacunculus phyllopus, B. granullico- 
lis, B. cornutus, B. blanchard: y Paraprisopus Sp. 
Por otra parte, se desea confrontar lo plantea- 
do por Sellick (op. cit.), en relación a la ausen- 
cia de capítulo en los géneros del Suborden 
Areolata lo que en parte contribuiría a susten- 
tarlo, puesto que la sola presencia del área 
apicalis en la cual se basa, es demasiado débil. 


MATERIALES Y MÉTODOS 


Los huevos se obtuvieron a través de posturas 
efectuadas en el laboratorio o de material de 


40 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


colección (hembras oviplenas), que fueron 
hervidas en agua por algunos minutos y luego 
disecadas. 

Las fotografías se efectuaron en lupas 
binoculares para las vistas generales y con mi- 
croscopio electrónico de barrido (Deol JSM 
255 11), con tratamiento previo de sombreado 
con Au-Pd durante 3 minutos, en unidad de 
sombreado Pelco Sputter, manteniéndose al 
vacío hasta la sesión fotográfica, en la que se 
utilizó película Kodak 100 asas formato 120. 

En la Fig. 1 se aprecian las estructuras utili- 
zadas para las descripciones, como también la 
forma en que se efectuaron las mediciones. 


Polo supe- 


Capítulo 


rior o ante- 2 
S Opérculo 
rior = 


dl 


Angulo in- 


clinación 


del opér= Ll linea media 


culo 


Alto 


Lámina micro- 


Lado ventral 


Lado dorsal 


pilar 


=43--Micropila 


Polo poste- 
rior o infe- 
rior Ancho 


Figura 1. Vista general de la cápsula del huevo o corion. 
Estructuras consideradas en las descripciones (según 
Clark, 1979). 


RESULTADOS 
Descripción de los huevos 


Los huevos de Agathemera (Fig. 3), de talla Ns 
6,4 mm (n = 20) tienen una relación largo/ 
ancho de 7:3. Lado dorsal convexo y ventral 
levemente cóncavo. Superficie aparentemen- 
te lisa, pero con débiles rugosidades regulares 
al microscopio de barrido. Opérculo (Fig. 4), 
circular y esferoidal, ubicado en el polo supe- 
rior, carente de reborde opercular, con un 
ángulo de inclinación de 27,5 + 0,5 grados, 
con o sin un pequeño capítulo mamilar cen- 
tral. Lámina micropilar (Fig. 3), lanceolada 
que cubre prácticament todo su largo, sin lle- 
gar a contactarse con el opérculo; perímetro 
delineado por una pronunciada cresta. Micro- 
pila (Fig. 5), como labio con sus comisuras ha- 


cia arriba, desde su parte central se continúa 
hacia el polo inferior por una carina. La línea 
media claramente delineada a todo lo largo de 
la lámina micropilar. Lámina micropilar inter- 
na, abierta (Fig. 2a). 


Figura 2. Láminas micropilares, vista interna. a. Agatheme- 
ra, b. Paraprisopus, c. Xeropsis, d. Bacunculus. 


En el género Paraprisopus los huevos tienen 
una talla X = 3,5 mm (n = 4) y una relación 
largo/ancho de 2:1. Lado dorsal suavemente 
convexo y ventral aplanado con banda adhesi- 
va extendida a todo su largo, polo superior 
aplanado (Fig. 6). Opérculo ovoidal liso, ubi- 
cado en el lado dorsal (Fig. 7) y cubriendo 
aproximadamente el tercio superior, con re- 
borde opercular y sin capítulo. Lámina micro- 
pilar casi imperceptible, de reducido tamaño. 
Micropila (Fig. 8) ubicada en la mitad inferior 
del lado dorsal, formada por dos estructuras: 
la basal como labio con sus extremos dirigidos 
hacia arriba y la superior en forma de lengúe- 
ta, proyectada en la concavidad central dejada 
por la estructura inferior. Lámina micropilar 
interna, cerrada (Fig. 2b). pa 

En Xeropsis la talla de los huevos es X = 4 
mm (n = 2), proporción largo/ancho de 7:4, el 
corion presenta una superficie rugosa y cada 
una de las crestas así formadas están orladas 
de una hilera de densas y largas cerdas 
(Fig. 9), lado dorsal notablemente curvo, lado 
ventral aproximadamente recto. Opérculo 
(Fig. 10), circular con una hilera de cerdas en 
su periferia, se ubica en el polo superior, sin 


| Camousseight y Bustamante: Huevos de Pseudophasmatidae de Chile 41 
OOO at A E e o 


Figuras 3-15: 3. Huevo de Agathemera, costado dorsal con lámina micropilar. 4. Id. ant., opérculo. 5. Id. ant., micropila 
(45x). 6. Huevo de Paraprisopus, vista lateral izquierda. 7. Id. ant., vista dorsal, opérculo y lámina micropilar. 8. Id. and., 
| micropila (45x). 9. Huevo de Xeropsis, vista lateral izquierda. 10. Id. ant., opérculo con capítulo (45x). 11. ant., micropila 
(100x). 12. Huevo de Bacunculus, vista ventral. 13. Id. ant., prolongaciones digitiformes sobre el corion (70x). 14. Id. ant., 
opérculo con capítulo (100x). 15. Id. ant., micropila (150x). 


42 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


reborde opercular, con capítulo en forma de 
corona de paredes rugosas con profundas de- 
presiones. Lámina micropilar fuertemente 
delimitada por un grueso pliegue, ubicada en 
el extremo dorsal inferior (Fig. 11), en su por- 
ción más inferior se ubica la micropila, como 
una profunda depresión, por sobre ella una 
estructura piramidal cuyo ápice se dirige hacia 
el extremo basal; el conjunto de la lámina y 
micropila es glabro, destacándose del resto de 
la superficie. Lámina micropilar interna, ce- 
rrada (Fig. 2c). 

Los huevos del género Bacunculus (Fig. 12) 
tienen una talla X = 3,3 mm (n = 30), propor- 
ción largo/ancho de 9:5, de lados suavemente 
convexos, toda la superficie rugosa con espa- 
cios más bien amplios distribuidos con una 
cierta regularidad, en los que se desarrollan 
pequeñas elevaciones digitiformes (Fig. 13). 
Superficie glabra a excepción del borde de 
inserción del opérculo que tiene una hilera de 
largas cerdas. Opérculo (Fig. 14), circular ubi- 
cado en el polo superior, sin inclinación, con 
capítulo circular elevado, en forma de empali- 
zada continua que deja en su interior un espa- 
cio libre y luego una estructura tri O tetra 
lobulada a modo de torreón central. Tanto en 
el espacio entre el borde del opérculo y el 
capítulo y en el espacio entre la empalizada y la 
estructura central se presentan microdigita- 
ciones. Lámina micropilar ovoidal (Fig. 15), 
semejante a Xeropsis, pero con un borde menos 
pronunciado, compuesto de pequeñas micro- 
digitaciones, ocupando la porción más distal 
del costado dorsal. Micropila excavada en la 
porción más distal de la lámina, por sobre ella 
una carena media que termina en una punta 
libre proyectada distalmente, el borde supe- 
rior de dicha carena es irregular. El conjunto 
se destaca nítidamente sobre la superficie co- 
riónica. Lámina micropilar interna, cerrada 


(Fig. 2d). 


DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES 


Los cuatro géneros estudiados corresponden 
a la totalidad de géneros de fásmidos conoci- 
dos de Chile; las modalidades de postura de 
sus especies representan los tres tipos consta- 
tados en este Orden. En Agathemera, las hem- 
bras introducen el extremo de su abdomen en 
la tierra blanda, operación que repiten nume- 


rosas veces; en Paraprisopus, los huevos deben 
ser pegados sobre algún sustrato particular, 
dadas las características peculiares de una es- | 
tructura adherente en el costado ventral, no 
hay observaciones a este respecto. Llama la 
atención la semejanza existente entre Prisopus 
y Paraprisopus tanto en lo relacionado a la for- 
ma de oviponer como en el hecho de que son 
los únicos géneros en que el opérculo se en- 
cuentra ubicado sobre el costado dorsal y en 
línea con la lámina micropilar. Es probable 
que con un estudio más acabado a este respec- 
to Paraprisopus se estableciera como sinónimo | 
de Prisopus. En Xeropsis y Bacunculus las hem- 
bras efectúan sus posturas dejando caer los 
huevos desde lo alto de las ramas donde se | 
posan y se alimentan. | 

En un trabajo anterior (Camousseight, 
1988) sobre especies del género Bacunculus, se 
analizó el género en el cual se reunieron los 
“palotes” de la región chileno-patagónica, 
adjuntándose antecedentes principalmente 
acerca de la morfología de las genitalias feme- 
ninas y masculinas. De este estudio se destaca 
la ordenación que adoptan las valvas que for- 
man la genitalia de la hembra y, muy especial- 
mente, la presencia de foliaciones basales, las 
cuales son visibles exteriormente a ambos cos- 
tados del extremo posterior del abdomen, los 
machos por su parte, tienen su genitalia orga- 


nizada básicamente sobre cinco lóbulos mem- 1 


branosos y una estructura quitinosa central, 


destacándose la estrecha relación establecida 1 


por dos de los lóbulos a través de una conspi- | 
cua zona de anclaje. Con anterioridad (Ca- 
mousseight, 1986) se estudió el género Xerop- | 
sis, monoespecífico y que representa también | 
a los “palotes” por su forma de rama o peque- Í| 
ño palo, estableciéndose la presencia de los: 
elementos básicos que comentamos (valvas, f 
foliaciones basales, zona de anclaje) pero con | 
una ordenación peculiar para el género. En ; 
esa oportunidad se cuestionó la inclusión del | 
género en la Tribu Xerosomatini, porque tan- [| 
to sus características morfológicas como su || 
distribución geográfica (38%45' - 41945" lat.S) 
no tienen relación con los otros 11 géneros 
que la constituyen (Bradley £ Galil, 1977). 
Respecto a este problema, los antecedentes 
aportados por el estudio comparado de los 
huevos relacionan a Xeropsis con Bacunculus 
por la presencia de conspicuos capítulos, su- 


Camousseight y Bustamante: Huevos de Pseudophasmatidae de Chile 43 


perficies coriónicas rugosas, láminas micropi- 
¡lares internas cerradas. Estos caracteres junto 
a aquellos de la genitalia, recién comentados, 


nos permiten, aceptando que el género Xerop- 
sis está mal ubicado en la Tribu Xerosomatini, 
sacarlo de allí y ubicarlo en la Tribu Bacuncu- 
lini, creada sólo para el género Bacunculus. Es 
sin duda, el parentesco del género Xeropsis con 
Bacunculus mucho más estrecho que con cual- 
quier otro que se conoce. La Tribu Bacunculi- 


ni estaría entonces integrada por estos dos 


géneros, característicos de una fauna del área 


' comprendida al sur del paralelo 302 lat.S. y la 


ladera occidental de la cordillera de los Andes. 


Respecto de lo que Sellick (1986) planteara 
en relación a la ausencia de capítulo en los 
huevos de la especie del Suborden Areolata, 
como una posible característica común a todas 
ellas, se puede afirmar que ello es falso, por- 
que a lo menos las especies de los géneros 
Xeropsis y Bacunculus tienen conspicuos Ca- 
pítulos y tienen además bien desarrollados 
triángulos en los extremos distales de sus ti- 


bias, por lo cual son entonces claros compo- 
nentes de este Suborden. 


REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 


BRADLEY, J.CH. 8 B.S. GaLIL. 1977. The taxonomic arran- 
gement of the Phasmatodea with keys to the subfami- 
lies and tribes. Proceedings of the Entomological So- 
ciety of Washington, 79(2): 176-208. 

CAMOUSSEIGHT, A. 1986. El género Xeropsis Redtenba- 
cher, 1906 (Phasmatodea: Pseudophasmatidae). Re- 
vista Chilena de Entomología, 14: 65-69. 

. 1988. Bacunculus cornutus comb. n. y B. blan- 
chardi n.sp. de Chile (Insecta: Phasmatodea, Pseudop- 
hasmatidae). Boletín del Museo Nacional de Historia 
Natural Chile, 41: 65-69. 

CLARK, J.T. 1979. A key to the eggs of stick and leaf insects 
(Phasmida). Systematic Entomology, 4: 325-331. 
REDTENBACHER, J. 1906. In Brunner von Wattenwyl, K. 8c 
J. Redtenbacher. 1906. Die Insektenfamilie der Phas- 

miden. Leipzig. 180 pp. VI Tafel. 

SELLICK J.T. CLARK. 1986. The micropylar plate of the 
eggs of Phasmatodea, and its taxonomic significance. 
1% International Symposium on stick insects. M. Maz- 
zini and V. Scali Eds. pp. 133-139. 


Rev. Chilena Ent. 
1991. 79: 45-50 


OBSERVACIONES EN LA NIDIFICACIÓN DE PACHODYNERUS PERUENSIS 
(SAUSSURE) (HYMENOPTERA: VESPIDAE: EUMENINAE)' 


ELIZABETH CHIAPPA” y MACARENA Rojas? 


RESUMEN 


Se entrega la descripción de sitios de nidificación de Pachodynerus peruensis, en el desierto de Atacama 
(I Región, Chile). Se detallan las características de los nidos y del número de presas que presentan. Se 


describen las formas inmaduras. 


ABSTRACT 


Descriptions of the nesting areas of P. peruensis in the Atacama desert of Chile are provided; 
characteristics of the nests and the number of preys are presented. The inmadure forms are also 


described. 


INTRODUCCIÓN 


En este trabajo se presentan las observaciones 
sobre nidificación y estados inmaduros de Pa- 
chodynerus peruensis (Saussure), realizadas en la 
Pampa del Tamarugal, en la 1 Región de Chi- 
le; el lugar está situado en un salar, en pleno 
desierto de Atacama, una de las zonas más 
secas y áridas del mundo. Esta especie es uno 
de los insectos que visita las inflorescencias de 
Prosopis, en busca de larvas de lepidópteros 
para abastecer los nidos y alimentar sus crías. 

Hay varias razones por las cuales este estu- 
dio fue realizado: 


— debido a que esta especie puede sobrevivir 
[en condiciones de aridez muy extremas, sl- 
tuación especialmente llamativa, conside- 
rando que la mayor parte de los Eumeni- 
nae, fabrican nidos de barro y necesitan 
agua para construirlos; 

— porque esta subfamilia, presenta una gran 
plasticidad en la conducta de nidificación, 
lo que hace importante conocer la biología 
de cada especie (Evans £e Matthews, 1974); 


"Financiado por Proyecto Fondecyt 0490-90 y Direc- 
ción General de Investigaciones de la Universidad Católi- 
ca de Valparaíso. 

“Laboratorio de Zoología, Universidad Católica de 
Valparaíso, Casilla 4059, Valparaíso - Chile. 

(Recibido: 25 de junio de 1991. Aceptado: 31 de julio 
de 1991.) 


— porque la clasificación genérica es poco es- 
table (Carpenter £e Cumming, 1985) y po- 
dría ser aclarada por el conocimiento de 
nuevos elementos a partir del análisis de los 
estados inmaduros y la nidificación; 

— por la escasa investigación sobre el compor- 
tamiento y la biología de estas especies. 


En este trabajo se sigue la clasificación de 
los Vespoidea propuesta por Carpenter 
(1982), quien presenta en su estudio, un análi- 
sis cladístico de caracteres y una hipótesis filo- 
genética, para establecer los taxa de esa super- 
familia. 


MATERIALES Y MÉTODOS 


Se estudiaron dos zonas de nidificación en la 
Reserva Forestal “El Refresco”, ubicada en el 
Salar de Pintados (20916" lat. S-69%48" long. 
W). Cada una de las áreas presentaba caracte- 
rísticas muy distintas entre sí, una de ellas en 
suelo muy duro, difícil de excavar y sin vegeta- 
ción, que se llamó zona A. Situada a una dis- 
tancia aproximada de 1 km, estaba la segunda 
área de nidificación, construida bajo un Proso- 
pis tamarugo, en suelo relativamente blando y 
arenoso, que se denominó zona B. 

Además, de material apropiado para exca- 
var, se utilizó agua para ablandar el terreno en 
los lugares más duros y complicados para tra- 


46 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


bajar, donde la capa de sal medía hasta 23 cm 
de profundidad; la consistencia en esta zona, 
cuando estaba seca, era semejante a la de un 
bloque de ladrillo. 

Se excavaron 16 nidos construidos en el 
salar, de los cuales se obtuvieron los siguientes 
datos: 


— estructura general del nido; 

—largo y diámetro de la chimenea, del túnel 
de entrada y las celdillas; 

— número de celdillas por nido; 

— número y especies de presas. 


Además, se estudiaron los estados inmadu- 
ros y se registraron los parásitos que se encon- 
traron en el área y en los nidos. Este material 
se fijó en una solución de formalina, ácido 
acético y glicerina, para su posterior estudio 
en laboratorio. 

Las observaciones, de cinco días de dura- 
ción cada una, se realizaron en febrero de 
1989, julio y octubre de 1990 y enero de 1991. 


RESULTADOS 


De acuerdo con lo observado, se encontraron 
adultos entre los meses de julio a febrero, con 
mayor abundancia en los meses de septiembre 
y octubre. 

Nidos. La densidad de los nidos alcanza a 
13 por m?, en las zonas más densas (Área B). 
Para realizar la tarea de excavación, las avispas 
no sólo utilizan sus mandíbulas, sino que tam- 
bién humedecen el suelo para ablandarlo, con 
néctar que regurgitan; esta estrategia es espe- 
cialmente eficiente en el Salar, lo que se pudo 
comprobar posteriormente utilizando el mis- 
mo sistema en la excavación de nidos. 

Externamente los nidos poseen una chime- 
nea cilíndrica, curvada horizontalmente; de 
más de 30 chimeneas observadas, se midieron 
4, que presentaban un X = 1,47 cm de altura 
máxima; su entrada, de diámetro muy varla- 
ble (rango = 5,40-6,28 mm), es ovalada dirigi- 
da hacia abajo y con su abertura paralela al 
suelo; el tubo tiene un diámetro X = 5,8 mm, 
más corto en la parte horizontal que en la 
vertical, con un ángulo variable entre ellas 
(Fig. 1). Algunas se encuentran construidas 
horizontalmente sobre el suelo, pero conser- 
vando la misma forma que las verticales. 


Figura 1. Vista lateral de la chimenea del nido de P. 
peruensis. La abertura, probablemente, impide la entrada 
de arena arrastrada por el viento. 


Para confeccionarlas, las avispas, pegan 
material tomado del suelo, cementado con al- 
guna sustancia producida por ellas; la cons- 
trucción no es una capa compacta ya que que- 
dan poros fácilmente visibles, lo que las hace 
bastante frágiles. En la parte externa, se pue- 
de notar una cierta simetría en la disposición 
de las partículas presentando, a veces, marcas 
externas circulares; la pared interna es más 
lisa. 

El nido se continúa internamente con un 
túnel casi vertical (Fig. 2A), de X = 10,57 cm 
de largo (rango = 7-21 cm; n = 7), con un 
diámetro bastante constante de X = 6 mm 
(rango = 5,02-6,8 mm; n = 8), que puede 
presentar las siguientes variantes: 

— más angosto en los primeros 3 cm, 
— de mayor diámetro cuando termina y a la 
entrada de cada celdilla. 


Existen 2-7 celdillas en la parte vertical del 
túnel, construidas en distintas direcciones, ge- 
neralmente horizontales o hasta con 45% de 
inclinación. Al final de su recorrido, el túnel 
central, da origen a un racimo de celdas, en 
número y tamaño variables (Tabla 1). 


Chiappa y Rojas: Nidificación de Pachodynerus peruensis 47 


TABLA 1 
MEDIDAS DE CELDILLAS 


Largo Ancho Abertura Abertura 
sin uso opérculo 
' Máximo 18,82 8,56 4,72 5,80 
' Mínimo 10,56 4,88 3,30 4,80 
| Promedio 13,63 6,42 4,22 5,33 
| Varianza 3,57 0,97 0,19 0,16 


| Desv. Est. 1,89 0,99 0,43 0,39 


Las celdillas tienen forma de barril, redon- 
' deadas en la base y truncadas en el ápice (Fig. 
'2B). Están constituidas por dos capas: 

— una externa, confeccionada con granos de 
arena y cementada con sustancias produci- 
das por la avispa, es más pulida interna que 
externamente y está recubierta por una fi- 
na película brillante, suave, flexible e im- 
permeable; 

— la otra capa, tejida por la larva, es de color 
blanco amarillento, delgada y transparente, 
no alcanza hasta la entrada de las celdillas y 
recubre las fecas depositadas en el fondo. 


En la parte superior, se encuentra el cierre 
en forma de un opérculo redondo, cóncavo 
por encina y convexo por dentro (Fig. 2C), a 
veces con una protuberancia interna central; 
está hecho de barro, pero más compacto y 
¡duro que las paredes de la celdilla. La larva, 
también teje un opérculo circular por debajo 
del anterior, hecho del mismo material con 
que recubre las paredes. 

Las celdillas usadas se diferencian fácil- 


Figura 2. A: estructura del nido, se observa la chimenea 
con abertura paralela al sustrato, escasas celdillas a lo 
largo del túnel y un racimo terminal. B: corte de una 
celdilla, mostrando la disposición de las fecas en el fondo. 
C: variación en la estructura del opérculo de las celdillas, 
el esquema superior muestra la faz interna recta, mientras 
que el inferior presenta protuberancia media central. 


mente, ya que el orificio que dejan los adultos 
al emerger es de menor tamaño que el orificio 
original (Tabla 1). 

Contenido de las celdillas. La avispa trans- 
porta una gran cantidad de larvas de lepidóp- 
teros para abastecer el nido; se encontraron 
hasta 106 larvas en una sola celdilla (Tabla 2). 
Las presas corresponden a Ithome sp (Walshii- 
dae), Leptotes trigemmatus (Lycaenidae) y Tep- 
hrinopsis sp (Geometridae). El aprovisiona- 
miento es de tipo masivo, pues una vez llenada 
la celdilla, la avispa la cierra con un opérculo 
definitivo. Las presas son solamente mordidas 
durante el transporte, presentando gran mo- 
vimiento dentro de las celdas, por lo que de- 
ben ser consumidas rápidamente, en caso con- 
trario, algunas pasan a estado de pupa y ya no 
son consumidas por la larva. 


TABLA 2 
NÚMERO DE PRESAS POR CELDILLA 


Larvas 


N? celdillas  Pupas  Ithome  Leptotes Tephrinopsis 


1 106 

2 5 

3 8 

4 2 10 

5 11 l 
6 13 84 

Y 32 19 ] 
8 4 25 8 

9 86 

n 19 367 27 2) 
Promedio 6,33 40,78 13,50 1,00 


Porcentaje 4,58 88,43 6,51 0,48 


En el fondo de las celdillas ya usadas, se 
observaron las fecas de la larva, en número de 
21-25 (n = 5), con forma de pequeños granitos 
casi esféricos, algo aplastados. Entre ellas, se 
encontraron restos de los lepidópteros, princi- 
palmente las partes más esclerosadas de la ca- 
beza y además, algunas mudas del himenóp- 
tero. 

Parásitos. En la zona de nidificación B, que 
presentaba mayor actividad, se observó una 
gran cantidad de parásitos volando, pertene- 
cientes a la familia Bombyliidae, a los que se 
vio lanzando huevos a los nidos. Además se 
encontraron exuvias, de los mismos, atascadas 


48 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


en la entrada de las chimeneas, sin ningún 
daño para estas últimas. Se encontraron 2 lar- 
vas del parásito, cada una dentro de una cel- 


dilla. 


Excepcionalmente se encontraron taquíni- 
dos, posiblemente llevados por la avispa en 
una larva de lepidóptero que estaba parasi- 
tada. 


ESTADOS INMADUROS 


Huevo. En cada celdilla se encontró un solo 
huevo: de color blanco amarillento, unido a la 
parte inferior de la pared lateral de la celdilla, 
por medio de un fino pedúnculo de 1 mm de 
largo, lo que también ocurre en algunas espe- 
cies de Euodynerus (Iwata, 1976); de 3 mm de 
longitud, forma cilíndrica, aunque ligeramen- 
te dilatado en el extremo fijo, alcanzando 
0,94-1,0 mm en su ancho máximo (X = 0,97 
mm; n = 2). 


Larva postdefecante 


Cuerpo cilíndrico, más cónico anterior que 
posteriormente, de color blanco amarillento 
(largo X = 8,99 mm; varianza = 0,975 mm; 
ancho = 3,83 mm; varianza = 0,236; n = 4). 
Segmento terminal algo redondeado, abertu- 
ra anal transversal en la mitad del último seg- 
mento. Tubérculos pleurales desarrollados, 
dorsalmente una elevación transversal poste- 
rior en cada segmento, excepto en el último. 
Espiráculos no sobresalientes; peritrema pre- 
sente, poco desarrollado; atrio casi esférico, 
con espinas largas distribuidas simétricamen- 
te, dando, externamente, aspecto de malla re- 
ticulada; área de unión con el subatrio con 
corona de espinas cortas, gruesas y más anchas 
que las del atrio, subatrio ovoidal con espinas 
más cortas que las anteriores, repartidas irre- 
gularmente. Cabeza pequeña, medida desde 
el borde inferior del labro al vértex, aproxi- 
madamente 1,56 mm de alto (rango = 1,32- 
1,66 mm; n = 10); ancho máximo = 1,66 mm 
(rango = 1,6-1,7 mm; n = 4); bandas parieta- 
les sobrepasando los alvéolos antenales, sin 
alcanzar la altura del borde superior del clí- 
peo, divergentes y levemente esclerosadas; su- 
tura coronal larga, poco marcada; sutura epis- 
tomal presente, ligeramente convexa; alvéolos 


antenales circulares, poco prominentes y algo 
esclerosados; clípeo cuadrangular, más ancho 
que largo (3:2), tercio distal con pilosidad; 
labro bilobulado y estriado en su extremo dis- 
tal; epifaringe con borde prominente, leve- 
mente estriado y esclerosado; hipofaringe con 
pequeñas espinas duras en toda su superficie; 
mandíbulas esclerosadas, triangulares, con 3 
dientes, el central sobresaliente al igual que el 
inferior, que es ligeramente curvo en la parte 
interna, el superior más corto que los anterio- 
res; cara interna con depresión central reco- 
rrida por el borde interno del diente medio, la 
externa formada por el diente medio que es 
muy protuberante; maxila con gálea cónica, 
pigmentada, de ápice truncado con 4-5 espi- 
nas en la superficie; palpos maxilares cilíndri- 
cos, con proyección ligeramente curva dirigi- 
da hacia la parte interna, sin pigmentación; 
labio con abertura salival transversal, ancha, 
esclerosada, rugosa, rodeada de pilosidad; 
palpos labiales, cilíndricos, con espinas en el 
ápice y corona interna de dientes pequeños en 
el tercio superior (Fig. 3). 


Figura 3. Cabeza, a: vista frontal con mandíbulas abiertas, 
para mostrar labio y maxilas; b: vista lateral; c: palpo 
labial; d: gálea; e: palpo maxilar; f: mandíbula, en vista 
dorsal y ventral; g: vista lateral de la larva; h: espiráculo. 


Chiappa y Rojas: Nidificación de Pachodynerus peruensis 49 


culos sobre la superficie corporal ni en las 
| patas; presenta espinas gruesas en el tegu- 
l mento abdominal, más desarrolladas en el 
borde distal; las antenas descansan en posi- 
¡ ción ventral, dirigidas hacia atrás y paralelas a 
¡la armadura bucal que también está extendida 
¡ ventralmente; glosa libre (Fig. 4). 


| Figura 4. Pupa, a: vista dorsal (izquierda) y ventral (dere- 
cha); b: vista lateral. No se observan mayores modificacio- 
¡ nesen el tegumento, a excepción de las espinas abdomina- 
Il les tergales translúcidas. 


DISCUSIÓN 


El género Pachodynerus ha sido poco estudia- 
do, tanto desde el punto de vista taxonómico 
como biológico (Carpenter, 1986). En Chile 
está representado por dos especies (P. gay: y P. 
| peruensis), cuya nidificación y estados inmadu- 
ros eran hasta ahora desconocidos. 

Uno de los aspectos más interesantes de la 
nidificación de P. peruensts, es que las áreas de 
nidificación están en una zona desértica, sin 
agua disponible, excepto la que pueden obte- 
ner del néctar. La zona, además de ser una de 
las más áridas del mundo, presenta una vege- 
tación compuesta casi exclusivamente por 5 
especies de Prosopis (Aguilera et al., 1986), y 
escasas plantas de otros géneros (Toro et al., 


1991). Los otros Eumeninae de Chile están, 
generalmente, asociados a lugares donde hay 
agua suficiente para poder fabricar sus nidos 
de barro, y con vegetación relativamente 
abundante. 

A partir del estudio de los nidos, se observa 
que hay poca variación en su construcción y se 
puede obtener, en base a algunos caracteres, 
un patrón estructural básico (Fig. 2A), que 
serviría de comparación con otras especies del 
mismo o de otros géneros. En P. peruensis exis- 
te una chimenea externa, a diferencia de lo 
que describe Iwata (1976) para otras especies 
del género, lo que corresponde bien a una 
plasticidad en el comportamiento y justifica lo 
dicho inicialmente en cuanto a la necesidad de 
conocer las especies de esta subfamilia que 
tienen conductas flexibles y diferentes entre 
sí. Varias interpretaciones existen en relación 
a la función que tienen las chimeneas, como 
por ejemplo, impedir entrada de parásitos 
(Iwata, 1976), evitar que entre agua a las gale- 
rías y las celdillas (Evans £e Matthews, 1974) o, 
en el caso de P. peruensis parece que, aparte del 
rol que pudiera tener para evitar el acceso de 
parásitos, tienen un papel muy importante en 
impedir la entrada de granos de arena, que 
son diariamente desplazados por los fuertes 
vientos de la región, demostrando así que la 
estructura puede ser adaptable a diferentes 
condiciones ambientales. 

En esta especie, como en otros Eumeninae, 
también la oviposición se realiza antes del 
abastecimiento de las celdillas. El huevo pre- 
senta una forma y posición semejante al géne- 
ro Euodynerus (Iwata, 1976). 

Hay varios autores que han clasificado los 
himenópteros por medio de sus formas inma- 
duras (Reid, 1942; McGinley 8: Rozen, 1987; 
Evans €e West-Eberhard, 1970), lo que corres- 
ponde a un diferente punto de vista que pue- 
de ser interesante, para ayudar a aclarar pro- 
blemas que no han sido solucionados por la 
morfología de los adultos. P. peruensis con- 
cuerda con los caracteres que Reid (1942) esta- 
blece para las larvas de Eumeninae, pero pre- 
senta caracteres propios como los del espirá- 
culo, maxilas y mandíbulas. 

En relación a los datos sobre el abasteci- 
miento, Iwata (1976) cita 21 individuos, como 
un elevado número de larvas para una sola 
celdilla de avispas de la subfamilia Eumeni- 


50 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


nae; la gran cantidad de larvas encontradas 
para P. peruensis (hasta 106 por celdilla), la 
convierten en una especie controladora de le- 
pidópteros en la zona de la Pampa del Tama- 
rugal (Fig. 5) en donde los lepidópteros consti- 
tuyen un serio problema para las especies de 
Prosopas allí presentes. Especialmente eficiente 
en el caso de lthome sp. (Lepidoptera, Walshii- 
dae) que según estudios realizados “puede 
comprometer hasta el 90% de los racimos flo- 
rales (de Prosopis)... y cuyos enemigos natura- 
les son escasos y en baja frecuencia”, por la 
dificultad de atacar a la larva del lepidóptero, 
que vive dentro del botón floral (Aguilera et 
al., 1986). En las celdillas de P. peruensis, el 
mayor porcentaje de presas colectadas para 
alimentar a las larvas correspondía a esa espe- 
cie de polilla. 


AGRADECIMIENTOS 


Se agradece a la Corporación Nacional Fores- 
tal (I Región), por haber permitido la realiza- 
ción del presente trabajo, en la Reserva Fores- 
tal “El Refresco”, en la Pampa del Tamarugal. 

Nuestros sinceros agradecimientos, van 
también, para el profesor Haroldo Toro G. de 
la Universidad Católica de Valparaíso, por la 
revisión crítica del manuscrito y a la Sra. Car- 
men Tobar, quien confeccionó los esquemas y 
dibujos de los ejemplares. 


LITERATURA CITADA 


AGUILERA, A.; D. BOBADILLA; R. CorTÉs € H. VarGas. 
1986. Estudio de insectos que atacan al tamarugo (Pro- 
sofis tamarugo) y algarrobo (Prosopis chilensis). Informe 
Técnico. Universidad de Tarapacá. Instituto de Agro- 
nomía. 

CARPENTER, J.M. 1982. The Phylogenetic relationships 
and natural clasification of the Vespoidea (Hymenop- 
tera). Systematic Entomology, 7: 11-38. 


Figura 5. Celdilla mostrando en su interior larvas de lepi- 
dópteros que servirán de alimento a la larva del himenóp- 
tero. 


CARPENTER, J.M. 1986. The Genus Pachodynerus in North 
America (Hymenoptera: Vespidae: Eumeninae). 
Proc. Entomol. Soc. Wash., 88 (3): 572-577. 

CARPENTER, J.M. 8 J.M. CummMING. 1985. A character 
analysis of the North American potter wasps. (Hyme- 
noptera: Vespidae: Eumeninae). Journal of Natural 
History, 19: 877-916. 

Evans, H.E. 8 R.W. MaTTHEWS. 1974. Notes on nests and 
prey of two species of ground-nesting Eumeninae 
from South America (Hymenoptera) Ent. News., 85 
(5-6): 149-153. 

Evans, H.E. £ M.J. WestT-EBERHARD. 1970. The wasps. 
David Charles, Newton Abbot. 1-265. 

IwarTa, K. 1976. Behavior of social wasps. In Evolution of 
instinct. Comparative Ethology of Hymenoptera. 
Amerid Publishing Co., New Delhi. 


MCGINLEY, R.J. 8c J.G. Rozen Jr. 1987. Nesting Biology, 
Immature Stages, and Phylogenetic Placement of the 
Palaeartic Bee Pararhophites (Hymenoptera: Apoidea). 
American Museum Novitates, 2903: 1-21. 

RerD, J. A. 1942. On the classification of the larvae of the 
Vespidae (Hymenoptera). Trans. R. Ent. Soc. Lon- 
don, 103: 27-84. 

Toro, H.; E. CH1appa; L. Ruz €: V. Cabezas. 1991. Com- 
portamiento reproductivo de Centris mixta tamarugalis 
(Hymenoptera: Anthophoridae) 1 Parte. Acta Ento- 
mológica Chilena, 16: 97-111. 


A... 


e 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 


NED 


OBSERVACIONES SOBRE EL GÉNERO PYCNOSIPHORUS: 
GRUPO FASCIATUS (COLEOPTERA: LUCANIDAE) 


JAcoBo NUMHAUSER A 


RESUMEN 


Se estudian 132 ejemplares de Pycnosiphorus provenientes de diversas localidades del sur de Chile, 
entre los 35%40' y 40%S. Los especímenes tienen en común, el de pertenecer al grupo de P. fasciatus, 
actualmente con dos especies conocidas: P. fasciatus (Germain) y P. calverti (Nagel). Se diferencian 
ambas especies considerando 14 caracteres, tanto de morfología externa como de la genitalia de macho 
y hembra; se incluye dibujos y una clave para separar ambas especies. Se discute la validez taxonómica 


de P. ariasi Weinreich. 


ABSTRACT 


A sample of 132 Pycnosiphorus is studied. The material was collected in different localities of southern 
Chile between 3540" to 40%S. The insects belong to P. fasciatus group, actually with two valid species: P. 
fasciatus (Germain) and P. calverti (Nagel). 14 morphological characters were considered to differentia- 
te both species, including genitaliad and 2; drawings and a key of species is included. P. anasi 


Weinreich is discussed its taxonomic validity. 


INTRODUCCIÓN 


En 1855 Germain describió un pequeño lucá- 
nido, denominándolo Dorcus fasciatus, colecta- 
do en algún lugar de Concepción, caracteriza- 
do por la presencia de tres franjas claras sobre 
los élitros. Las áreas claras tienen abundantes 
picnoescamas amarillentas que se insertan en 
la densa puntuación de la superficie elitral. 
Estas áreas están interrumpidas por solevan- 
tamientos del tegumento en forma de bandas 
negras, lisas y brillantes. El primer dibujo pu- 
blicado muestra una hembra en la que alter- 
nan cuatro áreas claras con tres bandas negras 
(Parry, 1864). Algunos autores destacaron 
más las bandas negras que las áreas claras 
(Deyrolle, 1864; Albers, 1891). Posteriormen- 
te Nagel (1932), en un extenso aporte, descri- 
bió un lucánido con sólo tres áreas claras, que 
denominó Sclerostomus calverti; para este mis- 
mo autor el Sclerostomus fasciatus presenta cua- 
tro áreas claras, y así las representa en los 


¡Sociedad Chilena de Entomología. Casilla 21132, 
Santiago-Chile. 

(Recibido: 25 de junio de 1991. Aceptado: 19 de octu- 
bre de 1991.) 


dibujos, con una característica área anterior 
clara alargada longitudinalmente desde el 
borde anterior del élitro, seguida de tres áreas 
claras transversales en el S. fasciatus y de sólo 
dos áreas claras más bien redondeadas u 
“ocelatas” en el S. calverti; a este último le dio 
como localidad Cunco. Didier y Seguy (1953) 
reconocen estas dos especies incluyéndolas co- 
rrectamente dentro del género Pyenosiphorus. 
En sus dos primeros trabajos sobre el género 
Pyenosiphorus, Weinreich (1958a, b) estudió 
una serie de lucánidos colectados en Cher- 
quenco y Termas de Tolhuaca, que presenta- 
ban sólo dos áreas claras; la primera corres- 
ponde al área longitudinal anterior propia de 
este grupo y la segunda a un área posterior 
“ocelata”, los cuales describió como P. arast; 
en su clave diferenciaba a tres especies: P. 


fasciatus, P. calverti y P. arias. Sin embargo, en 


un último aporte a este género, este autor 
(Weinreich, 1960), terminó por desestimar la 
validez de su P. ariasi dejándolo como sinon1- 
mia del P. calverti; criterio en concordancia 
con el de Benesh (1960). Sólo Weinreich 
(1960) efectúa un estudio, aunque somero, de 
genitalia; se trata en este caso de un dibujo de 
genitalia de la hembra de P. calverta. 


52 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


En el presente trabajo se estudia una serie 
de 132 ejemplares de Pycnosiphorus, que com- 
parten características propias del P. fasciatus y 
del P. calverts, que han sido colectados en dife- 
rentes áreas geográficas de Chile. Los objeti- 
vos del estudio son precisar los caracteres 
morfológicos diferenciales de las especies, es- 
tudiar la genitalia del macho y de la hembra, 
comentar acerca de su distribución geográfi- 
ca, cotejando estos hallazgos con lo consigna- 
do en la literatura. Se discutirá acerca de la 
validez taxonómica del P. arias. 


MATERIAL Y MÉTODO 


El material lo constituyen 132 ejemplares de 
Pycnosiphorus, 16 de mi colección particular y 
56 depositados en la colección entomológica 
del Museo Nacional de Historia Natural. Los 
caracteres seleccionados para el estudio com- 
parativo fueron 14, aquellos que me parecie- 
ron más evidentes y simples de precisar (ver 
Tablas 2 y 4 y Figs. 1 a 14). No consideré las 
diferencias mandibulares, que son propias del 
mayor o menor desarrollo del insecto como lo 
señalé en un trabajo previo (Numhauser, 
1981). De mayor importancia fue efectuar por 
primera vez para este grupo, un estudio de la 
genitalia en macho y en hembra. Los datos 
resultantes del estudio morfológico fueron 
confrontados con los de distribución geográfi- 
ca de los especímenes. Se discuten los hallaz- 
gos y se entrega una clave de las especies. 


RESULTADOS 


El material estudiado permitió confirmar la 
existencia de dos especies para este grupo de 
Pycnosiphorus, que comparten la característica 
de presentar en la superficie elitral unas áreas 
o franjas de color claro amarillentas, acribilla- 
das de puntuación, llenas con picnoescamas 
amarillas, en todo semejantes a las que se ubi- 
can tanto en la cinta marginal como en otras 
partes del tegumento, como en la excavación 
cefálica y del protórax. En P. fasciatus la pun- 
tuación es escasa, con un diseño dorsal proto- 
rácico muy peculiar: las áreas deprimidas for- 
man una X rodeada por un reborde en forma 
de U invertida o herradura con una escotadu- 
ra medial anterior. En tanto en P. calverti el 
reborde es más bien ojival y el diseño insinúa 


una Y, la escotadura media anterior es similar 
en ambas especies. La hembra P. calverti ofre- 
ce un tegumento acribillado de gruesa pun- 
tuación. El tamaño de estas especies se aprecia 
en Tabla 1; las hembras tienen un tamaño 
promedio de 12 mm en ambas especies, en 
tanto el macho P. fasciatus alcanza un tamaño 
promedio de 16 mm, y de sólo 14 mm el ma- 
cho P. calverts. 


TABLA 1 
VARIABLES MORFOMÉTRICAS DE 
PYCNOSIPHORUS GRUPO FASCIATUS 


P. fasciatus P. calverti 

s) rango 12-19 mm 11-16 mm 
promedio 16 mm 14 mm 

Q rango 10,5-14 mm 10,5-13 mm 
promedio 12 mm 12 mm 


Las características de las áreas claras elitra- 
les se consignan en la Tabla 2, encontrándose 
que el área 1 longitudinal anterior es más cor- 
ta en P. fasciatus y más larga en P. calverti 
llegando a sobrepasar la mitad del élitro. En P. 


fasciatus se aprecian tres nuevas áreas claras, la 


2 es “fasciata” sólo en un 54%, en tanto el área 
3 es “fasciata” en todos los ejemplares. En P. 


INABIVAA 
DISTRIBUCIÓN PORCENTUAL, 
SEGÚN ÁREAS CLARAS ELITRALES 
Y VARIACIONES, DE LOS EJEMPLARES 


EXAMINADOS 

P. fasciatus P. calverti 

área 1 longitudinal longitudinal 
sin variaciones sin variaciones 
= 57 (100%) = 28 (90,3%) 
con variaciones con variaciones 
= ( =3 

área 2 fasciata ocelata 
= 31 (54%) = 16 (52%) 
ocelata otras formas 
= 17 (30%) = 15 (48%) 
otras formas 
= 9 (16%) 

área 3 fasciata no existe 
= 57 (100%) 

área 4 ocelata abierta no existe 
hacia el ápex 
= 57 (100%) 


Numhauser: Especies de Pycnosiphorus grupo fasciatus 53 


calverti, sólo existe un área clara que sigue el 
área longitudinal, que puede ser “ocelata”, 
“fasciata” o con otras variaciones. Llama la 
atención que la forma “ocelata” del área 2 es 
francamente menos frecuente en los ejempla- 
res colectados en Termas de Tolhuaca, 52%, 
porcentaje que sube al 80% para el resto de las 
áreas donde se colecta P. calverti. Esta forma 
“ocelata” del área clara 2 en P. fasciatus es muy 
característica de los especímenes colectados en 
las altas cumbres de la cordillera de Nahuel- 
buta. 


Con respecto a la protuberancia retro- 
ocular de los machos de P. fasciatus, está pre- 
sente en todos los ejemplares examinados y en 
ninguno de P. calverti. Se trata de un tubérculo 
en los ejemplares más pequeños o de una fuer- 
te espina en los mayores, ubicada en el rebor- 
de cefálico del ángulo lateroposterior. Otro 
rasgo diferencial de las especies es el pequeño 
cuerno medial anterior en la excavación cefá- 
lica de la hembra de P. fasciatus, que no existe 
en la hembra de P. calverti,, en la que si se 
aprecia una fuerte puntuación. En Figuras l a 
8 se muestran los adultos de ambas especies, 
además de diversos detalles de la morfología 
externa. 


La genitalia es estudiada por primera vez 
(ver Figs. 9-14); la hembra P. calverti muestra 
unos estilos más cortos y gruesos, armados con 
cortas setas, en tanto la hembra de P. fasciatus 
presenta estilos más largos y angostos, con 
escasas y largas setas. La genitalia del macho 
de P. fasciatus muestra parámeros más peque- 
ños que la pieza basal, más juntos, con borde 
nítido y armados con abundantes setas cortas; 
en cambio, el macho P. calverti tiene paráme- 
ros de igual tamaño que la pieza basal, más 
separados, con un ancho reborde estriado y 
armados con escasas setas. Ambas especies tie- 
nen el pene terminado en un ancho y largo 
flagelo, del largo de todo el tegmen en P. 
fasciatus y al menos dos veces ese largo en P. 
calvert?. 


La distribución geográfica de la muestra se 
resume en la Tabla 3 de acuerdo a los datos 
consignados en las etiquetas, P. fasciatus se 
colecta en la cordillera de Nahuelbuta y áreas 
vecinas, a excepción de 8 ejemplares colecta- 
dos por P. Germain en Pemehue en 1896; y de 
3 especímenes de La Unión, fundo Curimón, 
Cudico. P. calverti se colecta desde Altos de 
Vilches en Talca hasta en Huellelhue, Valdi- 
via; pero indudablemente la mayor represen- 


g 
Vy YY y , AS 
ao Y AN 


> 
AS 


e 
e”, 
os 
14 a 
Pp y 
03 
TÁ 
w. 
e.” 
E 
e 
15 
4 
Figuras 1-4. Pycnosiphorus fasciatus (Germain). 1. Adulto, macho. 2. Clípeo; a = hembra, b=macho, 3. Cabeza, hembra. 


4. Diseño elitral, tipo “ocelata”. 


54 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


TABLA 3 
PROCEDENCIA GEOGRÁFICA DE LAS ESPECIES DEL 
GRUPO FASCIATUS 


P. fasciatus — P. calverti 


JOAO Talca: Altos de Vilches — l 
37-38" Cordillera de Nahuelbuta, 
Concepción y áreas vecinas 63 l 


38%15'-39% Cordillera de los Andes: 


Pemehue 8 9 
Lag. Malleco sas 1 
Termas Tolhuaca — 22 
Rucalemu e 9 
Curacautín = 3 
Termas Río Blanco = 1 
Conguillío = 6 
Cherquenco => 1 
Temuco — 3 
Villarrica pá l 
40" Huellelhue. Valdivia o l 
La Unión: Cudico 3 — 
sin datos 7 5 
Total: 84 48 
tación la tiene una colecta personal en Termas En Tabla 4 se consignan para fines compa- 
de Tolhuaca; este material presenta más mar- rativos, una serie de caracteres morfológicos 
cado el llamativo repliegue elitral longitu- con sus estados en cada una de las especies y, 
dinal. en algunos casos, en los respectivos sexos. 


Figuras 5-8. Pycnosiphorus calverti (Nagel). 5. Adulto, macho. 6. Clípeo; a = hembra, b = macho, 7. Cabeza, hembra. 
8. Diseño elitral; a = área 2 dividida, b = áreas 1 y 2 unidas, c = área 1 dividida. 


Numhauser: Especies de Pycnosiphorus grupo fasciatus 


TABLA4 


¡Su 
¡Su 


ANÁLISIS COMPARATIVO DE LAS ESPECIES DEL GRUPO FASCIATUS 


P. fasciatus Germain 


P. calverti Nagel 


Localidad 


Cabeza d : Protuberancia retrocu- 
lar 

Cabeza $: Puntuación 

Cuerno medial 

Élitros: 

Áreas claras: No 

Área 1 (anterior) 

Área 2 (media) 


Área 3 (posterior) 
Área 4 (apical) 
Repliegue longitudinal lateral 


Bandeleta 
Segmentos abdominales: 8” en g 


Cordillera de Nahuelbuta, Chivi- 
lingo, Contulmo, Cayucupil. 
Presente. 


Escasa. 
Presente. 


4 

Corta y ancha longitudinal. 
Transversal y ancha continuán- 
dose con la bandeleta lateral; 
otras son más bien “ocelata”. 
Transversal típicamente “fascia- 
2, 

“Ocelata” abierta hacia el ápex eli- 
tral. 

Ausente. 

Más ancha, no deja borde libre. 
Borde en cúpula, cerdas más 
gruesas. 


Termas de Tolhuaca, Rucalemu, 
Conguillío. 
Ausente. 


Abundante. 
Ausente. 


9 

Larga y angosta longitudinal. 
Area más bien circunscrita u 
“ocelata” con algunas variaciones. 


Ausente. 
Ausente. 
Presente. 


Más angosta y menos densa. 
Borde en arco, cerdas finas. 


OMENTO) Apice más recto, setas más abun- Ápice más agudo, setas escasas. 
dantes. 
8” en Y Borde cupuliforme; cerdas finas. Borde ojival; cerdas gruesas. 
Genitalia d 
Parámeros (PA): Juntos, borde simple, setas abun- Separados, reborde estríado, con 
dantes. escasas setas. 
Pieza basal (PB): Bordes más rectos. Forma arriñonada. 
Relación PA/PB PA <PB PA BB 
Flagelo: Ancho y corto, del largo del Ancho y largo, dos veces el largo 
tegmen. del tegmen. 
Genitalia Y 
Estilos: Más largos, con escasas y largas Más cortos; setas. 
setas. 
DISCUSIÓN de este grupo de Pycnosiphorus va seguida de 


Las publicaciones previas se basaban en un 
material muy reducido, por lo que algunas 
diferencias más propias de variedades o for- 
mas pudieron ser consideradas como distinti- 
vas de especie. Así fue como Weinreich 
(1958a, b) decidió que aquellos Pycnosiphorus 
con 4 áreas claras correspondían al P. fasciatus, 
con 3 áreas claras al P. calverti y con sólo 2 a su 
P. arias. Los hallazgos del presente trabajo 
concluyen que sólo se trata de dos especies, el 
P. fasciatus con 4 áreas claras, aunque a veces el 
área apical puede ser poco notoria, pues tien- 
de a confundirse con el resto de picnoescamas 
del tegumento apical del élitro; en tanto la 
otra especie, el P. calverti, presenta sólo dos 
áreas claras; la anterior y longitudinal propia 


un área “ocelata” en un 52% y de otra forma 
en el 48% restante. Las variedades correspon- 
den a material colectado en zonas alejadas 
unas de otras, la mayor cantidad de esta mues- 
tra proviene de localidades propias de los ti- 
pos, o de áreas similares, a excepción de esos 8 
ejemplares P. fasciatus de Pemehue, zona muy 
cercana a Termas de Tolhuaca, localidad pro- 
pia del P. calverta, y de 1 ejemplar P. calverta 
etiquetado como proveniente de Concepción, 
área característica del P. fasciatus. Nuevas co- 
lectas podrían dilucidar esta cuestión; pues 
bien, parece ser que el P. fasciatus tiene una 
distribución desde Concepción hasta Valdivia 
por la cordillera de la Costa, en tanto el P. 
calverti se localizaría desde Talca hasta Temu- 
co por la cordillera de los Andes. 


56 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


13 


Figuras 9-14. 9, 11, 13. Pycnosiphorus fasciatus (Germain). 10, 12, 14. Pycnosiphorus calverti (Nagel). 9 y 10. Octavo segmento 
abdominal, macho. 11 y 12. Detalle de la genitalia, hembra. 13 y 14. Esquema de la genitalia, macho. 


Decidí aceptar la determinación de Wein- 
reich (1960), a propuesta del propio Benesh 
(1960), de darle característica de sinonimia de 
P. calverti al P. ariasi, aunque la descripción, 
dibujos y localidad de esta especie descrita por 
Weinreich (1958a, b) calzan perfectamente 
con los hallazgos en este trabajo con el P. cal- 
verti, y no con el dibujo original de Nagel 
(1932) que le atribuyó 3 áreas claras al P. cal- 
verti. Como el tipo original descrito por Nagel 
había desaparecido, no hay la posibilidad de 


confirmar o rechazar la opinión de Weinreich. 
Hasta no haber nuevos datos me atengo a la 
decisión final de Weinreich. 


Especies válidas del grupo P. fasciatus: 


Pycnosiphorus fasciatus (Germain, 1855) 
(Dorcus) 

Pycnosiphorus calverti (Nagel, 1932) (Scleros- 
tomus) = Pycnosiphorus ariasi (Weinreich, 
1958). 


CLAVE DIFERENCIAL DE LAS ESPECIES 


1. Pequeños lucánidos que habitan los bosques de Notho- 
fagus de Chile y Argentina, caracterizados por poseer 
una bandeleta marginal de picnoescamas amarillentas 
o rojizas, además de diversos diseños de la superficie 
del protórax y de los élitros, según las espe- 
E A o o A género PYCNOSIPHORUS. 


— Pycnosiphorus con áreas claras elitrales llenas de pic- 
noescamas amarillentas, delimitadas por solevanta- 
mientos del tegumento, negros, lisos y brillantes. Las 
áreas claras pueden ser de 2 a 4, según las especies; 
pero, siempre existe un área clara anterior que se 
dirige longitudinalmente desde el borde anterior del 
élitro hacia atrás ...... grupo FASCIATUS ...... Ze 


2. Presentan un área clara elitral anterior larga, a la que 
le sigue un área clara más pequeña. El macho carece de 
protuberancia en el borde retrocular y la hembra 
carece de cuerno medial en la excavación cefálica. La 
depresión protorácica tiene una forma de Y. El flagelo 
del pene es al menos dos veces el tamaño del teg- 
A E eds O e Pycnosiphorus calverts. 

3. Presentan un área clara anterior corta, a la que le 
siguen 3 áreas claras, “fasciatas” u “ocelatas”. El macho 
posee una protuberancia en el borde retrocular y la 
hembra un cuerno medial en la excavación cefálica. La 
depresión protorácica tiene una forma de X. El flagelo 
del pene no sobrepasa el tamaño del tegmen 
nt errada td Pycnosiphorus fasciatus. 


Numhauser: Especies de Pycnosiphorus grupo fasciatus 57 


AGRADECIMIENTOS 


A los correctores de trabajos de la Sociedad 
Chilena de Entomología por sus valiosas y 
prolíficas sugerencias. Agradecimientos espe- 
ciales a don Mario Elgueta por haber dispues- 
to de un tiempo especial para revisar juntos las 
correcciones y por facilitarme ver el material 
de Pycnosiphorus depositado en la colección del 
Museo Nacional de Historia Natural. 


LITERATURA CITADA 


ALBERSs, G.F. 1891. Ueber Sclerostomus fasciatus Germain. 
D. Ent. Zeit., 1: 78-80. 

BENEsH, B. 1960. Lucanidae. In: Coleopterorum Catalo- 
gus supplementa edita a W.D. Hincks. Pars 8 (Editio 
secunda). W. Junk, The Hague. 178 pp. 


DeyroLLE, H. 1864. Description de pleusiers nouvelles 
especes de la famille des Lucanides. Ann. Soc. Ent. Fr. 
4: 311-320. 

DiprER, R. y E. Secuy. 1953. Catalogue illustre des Lucani- 
des du Globe. Encycl. Entom. 27. Lechevalier, Paris. 
223 pp. 

GERMAIN, P. 1855. Descripción de coleópteros de diversas 
especies que no se hallan en la obra del Sr. Gay. An. U. 
Chile, 12: 386-407. 

NaGEL, P. 1932. Neues úber Hirschkáfer. Ent. Blátt. Ber- 
lin, 28 (3): 113-121. 

NUMHAUSER, J. 1981. Variabilidad mandibular en espe- 
cies de Lucanidae. Rev. Chilena Ent., 11: 73-80. 
Parry, F.J.S. 1864. A Catalogue of Lucanoid Coleoptera. 
Trans. Entom. Soc. Lond., Third ser., 2 (1): 1-113. pl. 

III, fig. 4. 

WEINREICH, E. 1958a. Neue Arten der Gattung Pycnosip- 
horus aus dem Senckenberg Museum. Senck. Biol., 39 
(3-4): 169-176. 

WeEl¡NrEICH, E. 1958b. Die Sudamerikanishe Lucaniden- 
gattung Pycnosiphorus. Senck. Biol., 39 (5-6): 265-288. 

WEINREICH, E. 1960. Revision Sudamerikanisher Lucani- 
dae II. Senck. Biol., 41 (1-2): 41-95. 


.. eN OA 
REG! hi ET Al 
DAS 


a inbblicns. ). 


Moa Pe añ 
nan 


pa MY AAA y 


NU “E y MA ela de 


pen Me hy dy 1%.) 
ali yl 0 MW ¡EN y 
de sinó A 
ceiÑl ll PAGA, A 
AN 
yo 2d a AN An RNE AAA j Ñ "YA 
TN NO 
a P te me y TL MN de | 
¿il rs dd A ap ao a 
LR me 53 ml "BUNNY : 
ys 407 UN! EU) AN ) 3 
wi ) te 08 EAN EAS en 
ft uds ¡pla po A Y la pi pr 
' ei Ma 40Í Mos Ayu Woo DR IRA, 
Mgs 18 Y HARAN MN CIO $ ARI 
MIN eric add Pe Fl LS MR ss Y 


E HOylen ] 


Qe 


¿hay 


MO PU 


RADA 
AD det 2 2 A JAI 4 
we ITA EIN 3 


] 
¿EAN Dir A 


MA ¡E 


el ud eo Min de La pm 
AM e AAA id hos 
| me! y DAS ie rm Y 
má cúm. Ber EPIA ains sli Min Me ANN 
amarileráda, e ego o, A pls aña 
WAS EGUIR RA DEL lan th y Mali, 4 ¡MT 
4 preder er 0 gn A poa ", 


UIT pi dera 
O 


o A JA FONS E 


at Arda Ar Mo: 
tdo nl borde alla loe y 


OE LAS ESPE 


lo ood m1 acti 
aa We pol 


1 ¿md (Mépri). Ey 1, 


prat 
NT dl la armada mácio, Mm 
A 1 
Fi ¿Haras la aparcado bo 
0 ihr TIUCVON Matos UeO 
ue 0 e 
cial nal de Wenveich, 3 bi 
; A. 
Ñ - A el: AN O 
mtrs valia del rupo P fandva pun 
y Y 


PRENOSI Haro RECI ION ? ' mt: 


EPOPCIAS Y 


A 
MISION ÍA 


1 vii 10 ó 
arial 


1 
CIN A Wi MOI 


EOS 


h 
p NUS 


qe An 1 me di alii AN 
WU ute Hi ye qui: Pda 
rn pes Loa e AY Bardo. co 
da e A medad e de ura o 

dro TON poso ds E farias 


y 


1 Je Mes, 4 A le Ms. verd ed al 
AS UN e 
Pt cm id e f 


io 10d he 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 59-64 


FECAS DE HERBÍVOROS INTRODUCIDOS EN CHILE SEMIÁRIDO 
COMO HÁBITAT PARA EL DESARROLLO DE INSECTOS 


Francisco SÁIz' 


RESUMEN 


Se describe el desarrollo de dos especies de insectos en el interior de fecas de caprinos en Chile 
semiárido: un microlepidóptero y un coleóptero Ptinidae. 

Se discute la función del tubo de seda elaborado por la larva del microlepidóptero en el exterior de 
la feca y el posible rol de ambas especies en la descomposición de este tipo de fecas, así como su aporte 


de nutrientes al suelo. 


ABSTRACT 


The present paper describes the biological cycle of two insects inhabitant inside the goat-dung in 
semiarid Chile. The insects belong to a microlepidopteran and a Ptinidae (Coleoptera) species. 

The rol of the silk-tube, elaborate by the microlepidopteran larva externally to the goat-dung, and 
the possible effects of larvae on decomposition and on soil fertilization are discussed. 


INTRODUCCIÓN 


La descomposición de fecas de herbívoros en 
zonas áridas y semiáridas se ve dificultada y 
retardada por las altas temperaturas y la baja 
humedad ambiental, factores que limitan la 
acción de los descomponedores al provocar su 
rápido desecamiento y encostramiento. Esto 
es particularmente importante en las fecas de 
caprinos y ovinos, dado su reducido tamaño y 
su alta relación superficie/volumen. Obvia- 
mente, hay variaciones en su intensidad de 
acuerdo a la estacionalidad climática y a los 


diferentes hábitat presentes en la zona. 


De acuerdo a la literatura, la participación 
de Lepidoptera en la descomposición de fecas 
es muy reducida. Por ejemplo, Mohr (1943), 
Laurence (1954), White (1960), Macqueen y 
Beirne (1974), Nakamura (1975) y Putman 
(1983) no hacen mención de ellos. Merrit 
(1976) en su revisión de los hábitos tróficos de 
la fauna de fecas de ganado, tampoco cita a los 
lepidópteros. En cambio, Nakamura (1976) y 
Schoenly (1983) sí hacen mención del grupo. 


"Ecología, Universidad Católica de Valparaíso, Casilla 
4059, Valparaíso - Chile. 

(Recibido: 2 de julio de 1991. Aceptado: 16 de agosto 
de 1991). 


El primero lo cita en una Tabla de datos, con 
presencia mínima y sin indicar si se trata de 
larvas o adultos. Schoenly, indica que Semiothi- 
sa sp. (Geometridae) y Bula deducta (Noctui- 
dae), se alimentan de líquidos en las primeras 
fases (1-2 días) de descomposición de fecas de 
bovinos y equinos. Covarrubias et al. (1982) 
mencionan larvas de Lepidoptera en la des- 
composición de fecas de bovinos, con baja re- 
presentación, sin indicar familia ni modo de 
alimentación. 

Respecto a la participación de coleópteros 
de la familia Ptinidae, tampoco hemos encon- 
trado referencias en todos los trabajos citados 
anteriormente ni en varios otros que se han 
revisado. 


MATERIAL Y MÉTODO 


En la IV Región del país se ha introducido una 
alta cantidad de ganado caprino, junto a mula- 
res, ovinos y bovinos en muy inferior porcen- 
taje. El modo de crianza de las cabras, las que 
se dejan pastar libremente en las estepas de la 
zona, tiene como consecuencia la liberación de 
fecas en ambientes naturales. Estas fecas se 
deshidratan rápidamente cubriéndose de una 
costra dura y compacta. Las bajas precipitacio- 
nes de la zona no son suficientes para disgre- 
garlas. 


60 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


En esta área, más precisamente en una este- 
pa cercana a la localidad de Guanaqueros 
(30910'00"S), se realizó el presente estudio. 
Las especies vegetales dominantes son Haplo- 
pappus parvifolius y Cristaria betocaemifolra 
acompañadas por Hippeastrum bicolor, Plantago 
tumida, Gutierrezia paniculata, Chorizante fran- 
chenioides, Leucocoryne alliacea, etc. El suelo es 
arenoso profundo y el 70-80% de su superfi- 
cie está desprovista de arbustos. La estepa es 
costera y está sometida a influencia de la nebli- 
na marítima en forma más o menos regular. 

En este ambiente hemos encontrado dos 
especies de insectos cuyo desarrollo está liga- 
do íntimamente a las fecas de herbívoros. 
Una, corresponde a un Microlepidoptera de 
5-6 mm de largo, posiblemente de la familia 
Tineidae (Fig. 1) (Borror y DeLong, 1966), 
que presenta un peculiar sistema de desarro- 
llo larvario relacionado con las fecas, princi- 
palmente de caprinos, pero también encon- 
trado en fecas de mulares. La segunda especie 
corresponde a un coleóptero de la familia Pti- 
nidae. 


ES 
hal 


A) 
A 


Figura 1. Esquema de la venación alar del microlepidóp- 
tero. 


Las observaciones de terreno fueron com- 
plementadas con observaciones en Laborato- 
rio. Para ello se construyeron terrarios de vi- 
drio, en que las fecas se ubicaron en rejillas 
adecuadas a las características del desarrollo 
de los insectos. 

En total se han revisado más de mil ejem- 
plares de fecas de caprinos y más de 40 unida- 
des de fecas de mulares. 

Las determinaciones de contenido de N se 


hicieron en Laboratorio de Ecología de la P. 
Univ. Católica de Chile, mediante el método 
del microKjeldhal. 


ASPECTOS DEL CICLO DE 
DESARROLLO Y DISCUSIÓN 


A. Sobre la especie de Microlepidoptera” 


En terreno, las fecas con larvas no se distin- 
guen a simple vista de las otras. Sin embargo, 
al escarbar en la arena se detecta un vástago 
recto y perpendicular de unos 5-6 cm, alcan- 
zando a veces hasta 9 cm, introducido en la 
arena (Fig. 2). Estos vástagos habitualmente se 
presentan de a uno por feca, pero hay un 
porcentaje superior al 10% con 2 o más vás- 
tagos. 

Revisados en detalle dichos vástagos se de- 
tecta que son tubos de seda tejidos por la larva 
del microlepidóptero (Fig. 3), los cuales están 
regularmente recubiertos por granitos de are- 
na y les dan un aspecto externo de raicilla (Fig. 
4). El lumen se mantiene siempre abierto, a lo 
cual concurre la cubierta externa de granos de 
arena. No es infrecuente que se desarrollen 
tubos de conexión entre fecas contiguas, sin 


Figura 2. Posición de las fecas de caprino en el suelo, 
mostrando los tubos perpendiculares. 


“La determinación específica aún no ha sido enviada 
or el especialista. 
9 


Sálz: Desarrollo de insectos en fecas de hervíboros 61 


que necesariamente de éstas se desarrolle un 
tubo perpendicular. 

El tejido de seda se prolonga al interior de 
la feca donde habitualmente se alimenta la 
larva (numerosas excretas son visibles) (Fig. 


5). 


Figura 3. Características del tubo de seda recubierto por 
granitos de arena. 


Figura 4. Posición del tubo de seda y de la exuvia pupal en 
la feca de caprino. 


Figura 5. Posición de la exuvia pupal después de la emer- 
gencia del imago del microlepidóptero. Se observan ade- 
más 4 excretas larvarias. 


Nuestras observaciones nos llevan a pensar 
que el tubo tiene por función facilitar el des- 
plazamiento de la larva en profundidad en 
busca del recurso agua. Hay que recordar que 
se trata de un medio arenoso, de fácil percola- 
ción y con frecuente presencia de neblina cos- 
tera, la que habitualmente se condensa en la 
superficie del suelo durante la noche. Esta 
neblina o camanchaca es a veces muy densa. El 
agua obtenida por este mecanismo le permiti- 
ría usar un alimento muy seco como son los 
restos vegetales del interior de la feca. ¿Podría 
pensarse en alimentación fuera de la feca? 
Aparentemente no, ya que las excretas de las 
larvas, grandes y esféricas, repiten las estruc- 
turas de las fecas hospederas. 

Llegado el período de pupar, la larva (Fig. 
6) tapiza con seda el espacio interior de la feca 
dejado por su actividad de alimentación, con- 


Figura 6. Aspecto de la larva neonata del microlepidóp- 
tero. 


62 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


formando una especie de capullo. Este tapiza- 
do se hace continuando el tubo que sale al 
exterior y dispuesto en la misma dirección que 
éste, casi hasta tocar la superficie fecal opuesta 
a la entrada del tubo. 

Desarrollado el imago, éste emerge por un 
orificio en la pared opuesta a la entrada del 
tubo. Para ello, la parte de la pupa que com- 
promete a cabeza y tórax sobresale de la feca, 
quedando en su interior el sector correspon- 
diente al abdomen (Fig. 5). Luego se escinde la 
cubierta pupal y emerge el adulto. 

En terreno, y en contacto directo con la 
arena en área de fecas de caprinos, hemos 
encontrado también una hembra brachyptera 
en plena postura de huevos. Éstos son blan- 
quecinos, algo más largos que anchos, esferoi- 
dales, con 12-14 bandas anchas de polo a polo, 
ligeramente diferenciadas por líneas más le- 
vantadas y cubiertas por fina estriación para- 
lela en sentido transversal (Fig. 7). 


Figura 7. Aspecto general del huevo del microlepidóp- 
tero. 


En algunas fecas se ha encontrado un capu- 
llo más denso, cortado rectamente en un ex- 
tremo, el que estaría indicando la presencia de 
un parasitoide tipo Apanteles (Caltagirone, 
com. personal). 

En cuanto a la magnitud del rol de este 
modo de vida en la descomposición de las 
fecas, pensamos que es poco determinante. 
Ello porque: a) no hay destrucción de la feca 
con liberación de excretas de la larva, ya que la 
actividad de ésta no le resta resistencia, b) el 


área comida no es total y es casi totalmente 
reemplazada por las gruesas excretas de la 
larva y c) no afecta a la totalidad de las fecas. 

Por otra parte, el hecho de que el tamaño de 
las excretas de las larvas sea grande y la estruc- 
tura de las mismas muy grosera, haría pensar 
en poca eficiencia asimilativa y reciente utiliza- 
ción de este medio de vida. 

En recursos parcialmente similares, como 
son los cadáveres y otros restos animales, se 
menciona a las familias Pyralidae, Tineidae y 
Oecophoridae (microlepidópteros) partici- 
pando como succionadores de líquidos (adul- 
tos) o comiendo material seco (larvas, princi- 
palmente). En algunas especies, particular- 
mente de Tineidae, sus larvas construyen ga- 
lerías para desplazarse entre los restos o gra- 
nos (ataque a productos almacenados) en que 
viven. De esta última familia se cita a Monopas 
rusticella Clerck como especie asociada a restos 
animales secos y pellets de lechuza, pero no se 
mencionan estructuras como las aquí descritas 
(Smith, 1986). Trichopaga tapetzella (L.), la poli- 
lla de los tapices, construye un túnel recubier- 
to de seda entre los tejidos (Borror y DeLong, 
1966; Metcalf y Flint, 1965). 

En fecas de mulares, dado su mayor tama- 
ño, el número de tubos desarrollados, y por 
ende de larvas del microlepidóptero (la misma 
especie antes descrita), es muy alto por unidad 
de feca, contándose fácilmente 25 o más por 
unidad. 


B. Sobre la especie de Ptinidae” 

En otras fecas de caprinos, sin ninguna señal 
externa hasta la emergencia del adulto, se de- 
sarrolla una especie de Ptinidae. Comparacio- 
nes con el material del Museo Nacional de 
Historia Natural nos lleva a pensar en el géne- 
ro Ptinus, o en un género cercano a él. 

La larva, típica del grupo, tiene forma cur- 
vada en C, casi escarabeiforme, con mandíbu- 
las fuertes y desarrollo cefálico acentuado, con 
pilosidad larga y más o menos densa, blanque- 
cina cuando joven y amarillo caoba al final de 
su desarrollo. Se alimenta vorazmente del in- 
terior de la feca dejándola, al final de su ciclo 
de desarrollo, como una esfera cubierta débil 
llena de excretas muy finas y cilíndricas. 


“La especie está en determinación por el especialista. 


——_— -———=e 
AAA 


Ez 


Sáiz: Desarrollo de insectos en fecas de hervíboros 63 


Al terminar su desarrollo larvario cons- 
truye un fuerte capullo de seda, casi esférico y 
recubierto externamente por restos del mate- 


¡rial circundante, dentro del cual pupa. Un 


extremo del capullo queda cerca de la superfi- 
cie de la feca. Al emerger el adulto, éste rompe 


¡el capullo y emerge de la feca mediante un 
| orificio perfectamente redondo y visible a sim- 
ple vista. 


En un muy bajo porcentaje (no más del 3%) 
se ha encontrado desarrollo de esta especie en 
fecas ya afectadas por el microlepidóptero. 

Este tipo de desarrollo del ciclo vital de la 
especie nos parece que tiene un efecto claro en 


¡la descomposición de las fecas porque: a) con- 
sume la casi totalidad del contenido de la feca 


del caprino y lo transforma en pequenñísimas 
unidades de excretas larvales que fertilizarían 


el suelo, b) las fecas utilizadas por la especie se 
| rompen fácilmente, tanto antes de la emer- 
| gencia del adulto como después de ésta, libe- 
| rando al medio las excretas de la larva. 


Revisada bibliografía al respecto, práctica- 
mente no se encontró información sobre esta 
familia en relación a fecas de herbívoros (Me- 


| rrit y Anderson, 1977; Macqueen y Beirne, 


1975; Desiére, 1973, 1983 y 1987; Graef y 


| Desiére, 1984; Hanski, 1980a y b; Hanski y 
' Koskela, 1978). 


Hasta la fecha no hemos encontrado esta 


| especie en fecas de mulares. 


En Borror y DeLong (1966) y en Peterson 


| (1979) se cita a una especie cuyas larvas se 


desarrollan en fecas de ratas (Mezium america- 


|'num Lap.) 


Payne y King (1969) citan a Ptinus fur 1, en 


| carcasas secas de cerdos. 


En cuanto al posible efecto fertilizador de la 


| descomposición provocada por las dos espe- 
| cies en cuestión y de acuerdo a lo anterior- 
| mente expuesto y a los contenidos de nitróge- 


no en las excretas de las larvas (Tabla 1), se 


| esperaría un mayor efecto por la acción del 
|] coleóptero Ptinidae. Ello porque incorpora 
| más N por unidad de biomasa y sus excretas 
son fácilmente liberadas desde las fecas del 
herbívoro. 


C. Fauna concomitante 


¡ En las fecas de caprinos estudiadas es muy 


frecuente encontrar psocópteros en estados 


IPABIRAYI 
CONTENIDOS DE NITROGENO (%) EN FECAS 
NIENCRBIENS 


Sustrato Contenido de N (%) 


1,20 
IMM 
1,41 


Fecas de caprinos 
Excretas Lepidoptera 
Excretas Ptinidae 


preimaginales de desarrollo, siendo más evi- 
dente su presencia en fecas afectadas por mi- 
crolepidópteros. 

Otro grupo presente es el de Acarina, parti- 
cularmente representado por Actinedida y 
Acaridida. 


AGRADECIMIENTOS 


A la Sra. Carmen Tobar por la confección de 
las ilustraciones del trabajo. 


DADARATORZA CICAD 


Borror, D. yv D. DeLoxc. 1966. An introduction to the 
Study of Insects. Ed. Revisada. Holt, Rinehart y Wins- 
ton, Inc. 819 pp. 

COVARRUBIAS, R.; W. ORELLANA y J. VaLbeERas. 1982. 
Sucesión de microartrópodos en la colonización de 
fecas de bovino. Rev. Ecol. Biol. Sol.. 79(3): 363-381. 

Desiére, M. 1973. Ecologie des coléopteres coprophages. 
Ann. Soc. Rov. Zool. de Belgique, 103(1): 135-145. 

DesiErE, M. 1983. Ecologie des coléopteres coprophiles 
en prairie permanente paturée. I. Caractéristiques des 
populations de Coléopteres adultes coprophiles. Phé- 
nologie et dynamique saisonniere. Bull. Ecol. 14(2): 
SIMI. 

DesiérE, M. 1987. Ecologie de Coléopteres coprophiles en 
prairie permanente paturée. 11. Les brigades de co- 
léopteres adultes coprophiles. Bull. Ecol. 18(1): 13-21. 

GRAEF, F. y M. DesiirE. 1984. Ecologie des coléopteres 
coprophiles en prairie permanente paturée. III. Dy- 
namique et phénologie des guilds d'Hydrophilidae, de 
Scarabaeidae et de Geotrupidae. Bull. Soc. Roy. Sc. 
Liege, 53(3-2): 158-172. 

Hanski, I. 1980a. Migration to and from cow droppings 
by coprophagous beetles. Ann. Zool. Fennici, 17: 11- 


Haxski, L. 1980b. Pattern of beetle succession in drop- 
pings. Ann. Zool. Fennici, 17: 17-25. 

HansKi, I. y H. KoskELa. 1978. Stability, abundance, and 
niche width in the beetle community inhabiting cow 
dung. Oikos, 31: 290-298. 

LaureEncE, B. 1954. The larval inhabitants of cow pats. J. 
Animal Ecology, 23: 234-260. 

MACQUEEN, A. y B. BEIRNE. 1974. Insects and mites asso- 
ciated with fresh cattle dung in the Southern interior 
of British Columbia. J. Entomol. Soc. Brit., Columbia, 
71: 5-9. 


64 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


MACQUEEN, A. y B. BEIRNE. 1975. Effects of cattle dung 
and dung beetle activity on growth of beardless wheat- 
grass in British Columbia. Can. J. Plant. Sci. 55: 961- 
967. 

Merrrr, R. 1976. A review of the food habits of the insect 
fauna inhabiting cattle droppings in North Central 
California. The Pan-Pacific Entomologist, 52(1): 13- 
22. 


MERrRrIrr, R. y J. ANDERSON. 1977. The effects of different 
pasture and rangeland ecosystems on the annual dy- 
namics of insects in cattle droppings. Hilgardia, 45(2): 
31-71. 


MercaLF, C. y W. FLinT. 1965. Insectos destructivos e 
insectos útiles. McGraw Hill, 1208 pp. 


Mohr, C. 1943. Cattle droppings as ecological units. Eco- 
logical Monographs, 13(3): 276-298. 

NAKAMURA, Y. 1975. Decomposition of organic materials 
and soil fauna in pasture. 3. Disappearance of cow 


dung and associated soil macrofaunal succession. Pe- 
dobiologia, 15: 210-221. 


NAKAMURA, Y. 1976. Decomposition of organic material 
and soil fauna in pasture. 4. Disappearance of cow 
dung and succession of the associated soil micro- 
arthropods. Pedobiologia, 16: 243-257. 

PAYNE, J. y E. KinG. 1969. Coleoptera associated with pig 
carrion. Ent. Monthly Mag., 105: 224-232. 

PETERSON, A. 1979. Larvae of Insects. 11 Part. Edwards 
Brothers, Inc. 416 pp. 

PUuTMAN, R. 1983. Carrion and dung. The decomposition 
of animal wastes. Studies in Biology N* 156. Ed. Ar- 
nold, 62 pp. 

SCHOENLY, K. 1983. Arthropods associated with bovine 
and equine dung in an ungrazed Chihuahuan Desert 
ecosystem. Ann. Entomological Soc. of America, 
76(4): 790-796. 

SmITH, K. 1986. A Manual of Forensic Entomology. Bri- 
tish Museum (Natural History) and Cornell Univ. 
Press., 205 pp. 

WhrreE, E. 1960. The distribution and subsequent dissap- 
pearance of sheep dung in pennine moorland. J. Ani- 
mal Ecology, 29: 243-250. 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 65-69 


OBSERVACIONES BIOLÓGICAS SOBRE CALLISPHYRIS MOLORCHOIDES 
(GUERIN-MENEVILLE, 1838) (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE) 


Juan EnrIQUE BarriGa' y Thomas FicHer! 


RESUMEN 


Se entregan antecedentes sobre la biología de Callisphyris molorchoides (Guér.). Se reconocen sus plantas 
hospederas, todas pertenecientes a la familia Rhamnaceae y se establece la distribución geográfica de la 


especie. 


ABSTRACT 


Itis included information concerning the biology of Callisphyris molorchordes (Guér.). Its host plants are 
recogniced (all belonging to Rhamnaceae family), and it is stablished the geografical distribution of this 


species. 


INTRODUCCIÓN 


Guérin-Méneville (1838) describe esta especie 
bajo el nombre de Stenopterus molorchoides; pos- 
teriormente Fairmaire y Germain (1859) la 
redescriben, ubicándola en el género Callis- 
phyris Newm. 


Porter (1923), se refiere a un ejemplar cap- 
turado en la Prov. de Valparaíso; posterior- 
mente Bosq (1953), efectúa algunos comenta- 


rios sobre esta especie y la cita como presente 


en la República Argentina (Prov. de Neu- 
quén: San Martín de los Andes y Nahuel 


Huapi). 


Cerda (1986), cita a Callasphyris molorchoides 
como distribuido en las provincias de Valpa- 
raíso, Santiago y Malleco, siendo esta especie 
una de las de distribución más septentrional 
del género. 


El objetivo del presente trabajo es presentar 
observaciones acerca de la biología y plantas 


 hospederas de la especie 


Observaciones preliminares permitían pos- 
tular que Colletia sp. y Trevoa sp. (Rhamna- 


"Facultad de Agronomía, Universidad de Chile, Casi- 
lla 1004, Santiago-Chile. 

(Recibido: 3 de julio de 1991. Aceptado: 11 de octubre 
de 1991.) 


ceae), serían las plantas hospederas de este 
cerambicido. 


MATERIALES Y MÉTODOS 


El área de estudio se encuentra delimitada por 
las localidades de Zapallar (Prov. Petorca) y 
Guardia Vieja (Prov. Los Andes) por el Norte 
y Alto Vilches (Prov. Talca) por el Sur, entre el 
nivel del mar y los 1.600 m de altitud; además 
se efectuaron prospecciones en la cordillera 
de Ñuble y Malleco. 

Este estudio se efectuó entre septiembre de 
1987 y abril de 1991; en este período se reali- 
zaron numerosos muestreos, colectándose 
ejemplares adultos y/o larvas, para determi- 
nar el ciclo de vida de C. molorchoiwdes en esta 
zona. Además se hicieron observaciones para 
determinar el tipo de daño que ocasiona la 
larva al alimentarse, vegetales a los cuales se 
encuentra asociado y aspectos conductuales 
de larvas e imagos. 

Para este efecto, de las ramnáceas supuestas 
como hospederos de la especie, se recolecta- 
ron ramillas (de 0,3 a 1,5 cm de diámetro) que 
estaban secándose en su extremo, o ramas (1,5 
a 3 cm), troncos (3 a 10 cm) y raíces (> 1 cm) 
que poseían un daño notorio proveniente de 
un taladrador. En laboratorio, se mantuvo es- 
tas muestras las que fueron abiertas a interva- 


66 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


los de tiempo regular (mensual), para apreciar 
el estado de desarrollo del insecto. 


RESULTADOS 


Se observó que Callisphyris molorchoides vuela 
durante el día, en la mañana o al atardecer, 
alrededor de ramnáceas principalmente del 
género Colletia y Trevoa, durante los meses de 
primavera y verano. En dichas plantas se de- 
tectó la presencia de ramas afectadas y en su 
interior se constató la existencia de galerías 
que alcanzaban hasta 60 cm de longitud. 

El ataque de esta especie se realiza en plan- 
tas vivas, donde la hembra ovipone en ramillas 
mayores de 0,3 cm de diámetro y ramas y 
troncos de hasta 10 cm de diámetro. El huevo 
es colocado libre sobre la superficie lisa del 
vegetal, pegado con una substancia cementan- 
te (Fig. 1), no habiéndose encontrado huevos 
en rendijas o grietas de la corteza. Al eclosio- 
nar, la larva horada la rama o tronco en direc- 
ción siempre descendente. En el caso de ramas 
delgadas (como excepción en algunas más 
gruesas), la larva suele producir 1 a 4 cortes 
perpendiculares a esta (Fig. 1), cayendo el ex- 
tremo apical de la ramilla (la larva siempre 
queda en el extremo del corte unido a la plan- 
ta); este corte es similar al producido por otras 
especies de Callisphyris, lo que le ha valido a las 
especies de este género el nombre común de 
“sierras”. 


Figura 1. Huevos de C. molorchoides y corte perpendicular 
producido por la larva, sobre Colletia hystrix. 


La larva luego de penetrar a la planta co- 
mienza a horadar una galería en forma sub- 
cortical y descendente, pudiendo abarcar todo 
el diámetro en aquellas ramillas muy delga- 
das. En algunas ocasiones pueden presentar- 
se, en la base del tronco y raíces, galerías bifur- 
cadas con los brazos paralelos, hechas por una 
sola larva, o galerías muy tortuosas en los tron- 


cos. El diámetro de la galería es sumamente 
variable, tanto debido a la ubicación en la 
planta, al tamaño de la larva, a la planta hospe- 
dera, o la duración del ciclo de vida. 

En su última etapa la larva forma una cáma- 
ra engrosando el diámetro de la galería y per- 
forando un orificio, el cual posteriormente 
tapa con viruta para facilitar luego la salida del 
adulto (Fig. 2); en esta cámara pupa, perma- 
neciendo de 3 a 5 semanas en este estado antes 
de la emergencia del adulto (Fig. 3). El ciclo 
completo duraría aproximadamente 24 me- 
ses. En laboratorio se comprobaron algunos 
casos en que el ciclo duró 12 meses o, muy 
raramente, 36 meses o más (los períodos dife- 
rentes a 24 meses son aparentemente induci- 
dos por el medio, a causa de altas temperatu- 
ras, déficit hídrico del hospedero, o proble- 
mas de alimentación de la larva). 

Con los resultados obtenidos se puede pro- 
poner un ciclo biológico para esta especie, en 
la zona en estudio, representado en las Figs. 4 
a 6. 

Se observa un desfasamiento temporal en la 
ocurrencia de los diferentes estadios del desa- 


Figura 2. Cámara pupal de C. molorchoides con el orificio ) 
de emergencia taponado con viruta. | 


Barriga y Fichet: Biología de Callisphyris molorchowdes 67 


Figura 3. Cámara pupal de C. molorchoides sobre Colletia 
hystrix, con un imago en su interior. 


rrollo de norte a sur, siendo las poblaciones 
septentrionales más precoces que las australes 
(Fig. 4 y 6). Las poblaciones de la cordillera 
costera central presentan una situación inter- 
media (Fig. 5). 


Plantas hospederas: 


Hasta el momento no se conocían los hospede- 
ros de esta especie, por lo que aquí se hace 
entrega de los nombres de aquellos en que se 
detectó ataque en terreno. 

Todos los hospederos conocidos (en el mis- 
mo orden de importancia), pertenecen a los 
géneros Colletía (crucero, llaqui, yaquil), Tre- 
voa (tebo, trebo) Retantlla (retamo, retanilla) y 
Discaria (chacay, crucero, llaqui, yaquil), de la 
familia Rhamnaceae. 


Meses 
e A A 


—Imago en camara —— 

—Imago emergido == 

—= Huevo — 

=larva 

=Pupa == 


Figura 4. Ciclo biológico de C. molorchoides (Guér.) estima- 
do para la cordillera de los Andes, Región Metropolitana y 
V Región, entre 600 y 1.500 m (26 meses). 


Estados ESA SN Ñ . MS 


-Imago en cámara — 

—Imago emergido — 

—= Huevo _— 

=larva 

=Pupa =1E 


E 
AAA NA AA 


E 


Figura 5. Ciclo biológico de C. molorchoides (Guér.) estima- 
do para la cordillera de la Costa entre las Regiones V y VI 
(25 meses). 


Meses 
Estados ER EAN 


—-Imago en camara — 

—Imago emergido == 

— Huevo — 

=larva 

=Pupa A — 


Figura 6. Ciclo biológico de C. molorchoides (Guér.) estima- 
do para la cordillera de los Andes entre las Regiones VII y 
IX, sobre Colletia spp. (24 meses). 


En el mismo orden de importancia, en la 
zona en estudio se la detectó atacando princi- 
palmente arbustos de: Colletia hystrix Clos 
(tronco, ramas y ramillas), Trevoa trinervis 
Miers. (ramas y ramillas), Colletia ulicina Gill. 
et Hook (ramas principalmente), Trevoa spin:- 
fer Clos (ramas y ramillas), Retamilla ephedra 
(Vent.) Brongn. (ramas, tronco, base del tron- 
co y raíces), y Discaria chacaye (G. Don) Tortosa 
(ramas y ramillas); en mucho menor nivel en 
Discaria trinervis (H. et A.) Reiche. (ramas y 
ramillas) y Retanilla stricta H. et A. (ramas). 


La distribución del principal hospedero, 
Colletia hystrix es la más amplia de todas, en- 
contrándose desde los 28930" (valle del Huas- 
co), hasta los 47? lat. Sur (península de Tai- 
tao), y desde el nivel del mar hasta los 2.000 m. 
Esto hace pensar que C. molorchoides podría 
encontrarse más al Norte y más al Sur de lo 
detectado hasta ahora. El resto de las especies 
detectadas como hospederos, se superponen 
en distribución a Colletía hystrix (ver Fig. 7). 


68 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


MATERIAL ESTUDIADO 


(de norte a sur, por provincias; 
las fechas corresponden 
a emergencia de adultos.) 


Criados de material: 


—Petorca: Zapallar, X-1983, leg. J.E. Barriga, 
l ej., en Trevoa trinervis. 

— Valparaíso: Quintay, XI/XII-89, leg. J.E. 
Barriga, 8 ej.; Casablanca, XI1-89, leg. J.E. 
Barriga, 1 ej.; Las Taguas, Peñuelas, XII- 
89, leg. J.E. Barriga, 6 ej.; todos criados en 
Trevoa trinervis. 

— Los Andes: Guardia Vieja, XI/XII-90 y I- 
91, leg. T. Fichet, 9 ej.; XI/XII-90, leg. J.E. 


Figura 7. Mapa de distribución de Callisphyris molorchoides 
(Guér.) y de los hospederos conocidos (achurado). 


Barriga, 3 ej.; todos criados en Colletia hys- 
trix. 

— Chacabuco: Cuesta la Dormida, XI-88, leg. 
T. Fichet, 3 ej., en Colletia hystrix; X1-89, leg. 
J.E. Barriga, 3 ej., en Colletiía hystrix; X1-89, 
leg. J.E. Barriga, 4 ej., en Retanilla ephedra; 
XI-89, leg. J.E. Barriga, leg. 2 ej., en Trevoa 
ÍTINETUIS. 

—San Antonio: Tunquén, XII-89, leg. J.E. 
Barriga, 4 ej., en Trevoa trinervis. 

— Talagante: Naltagua, 6-1-80, leg. J.E. Barri- 
ga, 1 ej.; 23-XI1-89, leg. J.E. Barriga, 1 ej.; 
XII-90, leg. J.E. Barriga, 7 ej.; todos criados 
en Trevoa trinervis. 

— Santiago: El Arrayán, 20-X1-87, leg. J.E. 
Barriga, 21 ej.; 5-X1-87, leg. J.E. Barriga, 
12 ej.; 5-XI-87, leg. J.E. Barriga, 10 ej. (me- 
lánicos); todos criados en Colletia hystrix; Los 
Dominicos, XII-90, leg. T. Fichet, 1 ej., 
criado en Trevoa trinervis: Camino a Farello- 
nes, IX-89, leg. J.E. Barriga, 14 ej.; X/XI- 
90, leg. T. Fichet, 8 ej. (normales y meláni- 
cos); todos criados en Colletia hystrix. 

— Cordillera: Río Colorado, 15-XI-87, leg. 
J.E. Barriga, 31 ej.:San Gabriel, 10-X-88, 
leg. J.E. Barriga, 22 ej.; El Volcán, 1.500 m, 
X-87, leg. J.E. Barriga, 36 ej.; 13-XI1-88, 
leg. TT. Curkovic, 1 ej.; 15-IX-89, leg. J.E. 
Barriga, 12 ej.; 7-X-89, leg. J.E. Barriga, 11 
ej.; X/XI/XII-89, leg. T. Fichet, 5 ej.; todos 
criados en Colletia hystrix. 

— Colchagua: Placilla, X1-90, leg. J.E. Barri- 
ga, 3 ej., en Trevoa trinerms. 

— Curicó: Los Queñes, XI1-85, leg. J.E. Barri- 
ga, 1 ej.; Potrero Grande, XI-90, leg. J.E. 
Barriga, 1 ej.; todos criados en Trevoa tri- 
NETUIs. 

— Talca: Alto Vilches, 27-X11-87, leg. J.E. Ba- 
rriga, 6 ej.; XII-90, leg. T. Fichet, 3 ej.; 
todos criados en Colletia ulicina. 

— Ñuble: Puente Marchant, X-1989, lesa? 
Barriga, 7 ej., en Colletía hystrix. 

— Malleco: Termas de Río Blanco, IX-1988, 
leg. J.E. Barriga, 5 ej.; Lonquimay, IX-88, 
leg. J.E. Barriga, 2 ej.; todos criados en 
Colletra hystrix. 


Adultos colectados 

(de norte a sur por provincias): 

— Maipo: Rangue, 18-XII-90, leg. J.E. Barri- 
ga, l ej. 


Barriga y Fichet: Biología de Callisphyris molorchoides 69 


— Cordillera: El Volcán, 15-X1-89, leg. J.E. 
Barriga, 1 ej. 

—KNuble: Puente Marchant, 21-1-1989, leg. 
J.E. Barriga, l ej. 


COMENTARIOS 


Callisphyris molorchordes es una especie muy va- 
riable en colorido, existiendo ejemplares de 
coloración oscura en el extremo norte de la 
zona analizada. Además es una especie apa- 
rentemente muy variable en tamaño; esta va- 
riabilidad se manifiesta entre ejemplares obte- 
nidos de una misma planta, así como también 
entre ejemplares obtenidos entre diferentes 
especies de plantas, siendo aquellos criados de 
Colletia ulicina los de mayor tamaño (cordillera 
de Talca), seguido por los de Colletia hystrix, y 
los de menor talla aquellos criados de Trevoa 
sp., y Discaria sp.; normalmente son las hem- 
bras de mayor tamaño que los machos. 

En relación al daño que produce, se puede 
señalar que es muy variable según los hospe- 
deros, como también según la localidad de 
donde provengan. 

En la cordillera de los Andes (V Región y 
Región Metropolitana), en las zonas altas 
(1.000 a 1.500 m), el ataque se produce funda- 
mentalmente en Colletiía hystrix, ubicándose 
principalmente en las ramillas; a esta altura 
hay escaso ataque a Trevoa trinervis. En las 
zonas precordilleranas, en cambio, hay un au- 
mento en el ataque a Trevoa trinervis y en Colle- 
tía hystrix el daño es tanto en ramas como en 
ramillas. 

En la cordillera de la Costa, el ataque se 
concentra principalmente en Trevoa trinervis, 
tanto en ramillas como en ramas y en mucho 
menor grado en Colletia hystrix, con daño prin- 
cipalmente en ramas; en Retanilla ephedra el 
daño es generalmente en el tronco, prolon- 
gándose hasta las raíces. 


En Ñuble y Malleco, el ataque fue detectado 
sobre Colletía hystrix, afectando principalmen- 
te a ramas y tronco; en esta zona solo se mues- 
treó Colletía hystrix y Discaria sp., no detectán- 
dose ataque en plantas de este último género. 

Esta especie está ampliamente distribuida 
en toda la zona en estudio, viviendo en muy 
distintos ambientes, a diferencia de otras espe- 
cies de cerambícidos que prefieren ciertos am- 
bientes más estables (Fichet y Barriga, 1990). 


Se encuentra desde lo alto de Los Andes hasta 
el nivel del mar, y desde la zona xerofítica de la 
V Región, hasta la humedad del sotobosque 
de Fagaceas. 

La principal causa de muerte de esta espe- 
cie antes de salir de las cámaras pupales, sería 
por aves (fueron observados tordos), los cua- 
les se alimentan de las larvas, pupas o adultos 
que se encuentran al interior de éstas; el daño 
producido por estas aves se detectó en las ra- 
millas delgadas , las cuales eran fácilmente 
perforadas por sus picos. 

En la zona en estudio se han encontrado 
varias especies de parásitos atacando larvas de 
C. molorchoides (Barriga, 1990), principalmen- 
te una especie de Pteromalidae, Proglochin ma- 
culipenmis Philippi; además se detectó Proglo- 
chin sp., una especie de Ichneumonidae y dos 
especies de Braconidae no identificados. Las 
crianzas de esta especie fueron sumamente 
atacadas en laboratorio por ácaros, aparente- 
mente de la especie Pyemotes ventricosus Newp., 
los cuales las diezmaron. 

Esta especie en estado adulto aparentemen- 
te no sería atacado por aves u otros predato- 
res, puesto que imita tanto en colorido, forma, 
como en los movimientos que realiza y sonido 
que emite al desplazarse, a avispas euménidas 
del género Hypodynerus. 


AGRADECIMIENTOS 


AlSr. Jorge Macaya por su asesoría Botánica y 
al Sr. Mario Elgueta, por la lectura crítica del 
manuscrito. 


LITERATURA CITADA 


BARRIGA, J.E. 1990. Parásitos y depredadores de larvas de 
Cerambycidae y Buprestidae (Coleoptera) de Chile. 
Rev. Chilena Ent., 18: 57-59. 

Boso. J.M. 1953. Longicornios del Parque Nacional La- 
nín. An. Mus. Nahuel Huapi, 3: 69-87. 

CERDA, M., 1986. Lista sistemática de los cerambícidos 
chilenos (Coleoptera: Cerambycidae). Rev. Chilena 
Ent., 14: 29-39. 

FAIRMAIRE, L. et P. GERMAIN. 1859. Révision des coléopte- 
res du Chili. Ann. Soc. Ent. Fr., 7: 483-532. 

FicHer, T. € J. E. BARRIGA. 1990. Observaciones biológi- 
cas sobre Holopterus annulicornas F. Philippi, 1859 (Co- 
leoptera: Cerambycidae). Rev. Chilena Ent., 18: 61- 
65. 

GUÉRIN-MÉNEVILLE, F.E. 1838. Insectes du voyage de la 
Favorite Mag. Zool., vol. 8, p. 66. 

PorTER, C.E. 1923. Dos longicornios raros O poco co- 
nocidos. Rev. Chil. Hist. Nat., 27: 52-53. 


| dali is 
elo pardo RR 
AA, pq y y Ailioe bn) 
, a dl OS O ep hol holaa 5 

K Eo A ds enfado pe hd 
| susto aiges pole Mo EE cren ad LAN OMIC CA 
ceoRRi e Lao esbiras :; 99H 20003 049/2408 CON 
ON Mec erat ssl ¿bouq e DARA 
AAA AN 50d a von COMA 

"bx A sl e Mat: 


= 


DAS k RÍA de OA apé sl | 
bi sierra los EY ON y ( 
ea A h AmO A Me od 
Us AN dl A 
¡can end dl) 


e git 
| palo at Pl ¡53 PA Es 


l Peal ' bel dal 102 JAN 
' bd bota: 1 6 muatal: 


lr A db de teka do 


jul 04 
hu ae | qe 
¿E mn did De 


Midi A 


e Y ae) 20 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 71-75 


NEW RECORDS OF SOUTH AMERICAN PELORIDIIDAE 
(HOMOPTERA: COLEORRHYNCHA) 


DanieL BURCKHARDT! 8 Donar AGosTI 


2 


ABSTRACT 


New records are given for seven Chilean species of Peloridiidae and the published information on 
South American species is summarised. The new material extends the known range of South Ameri- 
can peloridiids considerably to the North. Distribution patterns of South American peloridiids are 


briefly discussed. 


RESUMEN 


Se indican nuevos registros para siete especies de Peloridiidae y se resume la información bibliográfica 
existente acerca de las especies sudamericanas. El material estudiado amplía hacia el Norte, considera- 
blemente, el rango geográfico, hasta ahora conocido, de los peloridiidos sudamericanos. Se discute 
brevemente los modelos de distribución de los peloridiidos sudamericanos. 


INTRODUCTION 


Peloridiids are small, flattened bugs which live 
in moist moss (Figs. 1, 2). Evans (1981) recog- 
nised 25 species in 13 genera. The group is 
restricted to the Southern hemisphere sho- 
wing a typical antarctic distribution similar to 
that of Southern Beech (Nothofagus, Betula- 
ceae). Most of the biotopes in which these bugs 
occur are temperate and subantarctic rain fo- 
rests. Peloridiids are rarely collected as special 
techniques are required sample them. Many 
species are known from a single or few locali- 
ties only, and little is known of their distribu- 
tions. 

The South American fauna comprises to 
date the three monotypic genera Peloridium, 
Pantinia and Kuscheloiwdes, as well as Peloridora 
with three species (China, 1962; Evans, 1981; 
Cekalovic, 1986). Pelorndium hammontorum and 
Peloridora kuscheli are known from several 
localities whereas the remaining species are 
recorded only from the type locality. 


'Muséum d'Histoire naturelle, Départment d'Ento- 
mologie, Case postale 434, CH-1211 Geneve, Switzerland. 

“Zoologisches Institut, Universitát Zúrich, Winterthu- 
rerstr. 190, CH-8057 Zúrich, Switzerland. 

(Received: 22 August 1991. Accepted: 30 October 
1991.) 


During a two months expedition to Chile in 
December 1990 and January 1991, where par- 
ticular emphasis on collecting forest litter 
dwelling arthropods was given, we found 
seven species of Peloridiidae represented by 
over 560 specimens. A list of the recorded and 
new localities of all South American species is 
given below. A taxonomic treatment of the 
material will be published elsewhere. 


MATERIAL AND METHODS 


All the specimens were extracted from sifted 
leaf litter samples using “Winkler/Moczarski” 
eclectors (Besuchet et al., 1987). Unless stated 
otherwise, the material was collected by both 
authors (IX and X Regions) or by the senior 
author (XII Region) and is deposited in the 
Muséum d'Histoire naturelle, Geneva, Swit- 
zerland (MHNG), and the Museo Nacional de 
Historia Natural, Santiago, Chile (MNNC). 
Types from the Natural History Museum, 
London, U.K. (BMNH) were studied. 


LIST OF SPECIES 
Peloridvuum hammoniorum Breddin 
(Fig. 1) 
Distribution. Recorded from Chile: XI Re- 
gion, Province Aisén (Coyhaique); XII Re- 


72 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


glon, Province Magallanes (Punta Arenas, Se- 
no Otway), Province Antarctica Chilena (Isla 
Navarino, Isla Bertrand); and Argentina: 
Chubut (V. del Lago Blanco) (China, 1962, all 
records published up to this date are summa- 
rised here; Cekalovic, 1986). The record of 
Peloridiidae from Chile: XII Region, Provin- 
ce Ultima Esperanza (Río Rubens, Monte Al- 
to) by Lanfranco (1977) probably concerns 


Peloridium hammoniorum. 


Material examined. Chile: 1 damaged 
adult, IX Region, Province Malleco, Parque 
Nacional Nahuelbuta, near “Administracion”, 
37%50'S 73%00'W, 1.100 m. 14-17.XI1.1990, 
mixed Nothofagus forest with Araucaria along 
river, and pasture with shrubs, sifting of vege- 
tational debris and moss; 14, IX Region, Pro- 
vince Cautín, Parque Nacional Huerquehue, 
between “Administracion” and Lago Chico, 
39%08'-10'S 71%44'W, 800-900 m, 22- 
24.X11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer fo- 
rest, sifting of vegetational debris and moss; 
19, 2 larvae, XII Region, Province Ultima 
Esperanza, Parque Nacional Torres del Paine. 
Lago Grey, 100 m, 12.1.1991, Nothofagus an- 
tarctica forest, sifting of vegetational debris 
and moss; 4 larvae, XII Region, Province Ulti- 
ma Esperanza, Monte Alto, 52%05'S 71%55'W, 
180 km NNW Punta Arenas, 400 m, 
15.1.1991, Nothofagus pumilio forest, sifting of 
vegetational debris and moss; 3, larvae, XII 
Region, Province Magallanes, Reserva Nacio- 
nal Parrillar, 53%19'S 71210'W, 300 m, 
17.1.1991, Nothofagus betuloides forest, sifting 
of vegetational debris. 


Comment. China (1962) mentioned that 
the specimen from Chubut may not be cons- 
pecific with Peloridium hammontorum. The pre- 
sent material is insufficient to decide whether 
there are any differences between the mate- 
rial from the IX and X Regions and that of the 
XI and XII Regions. 


Peloridora kuschel: China 
(Fig. 2) 


Distribution. Recorded from Chile: IX Re- 
gion, Province Cautín (Lago Caburgua); X 
Región, Province Llanquihue (lake Llan- 
quihue, Frutillar, 15 km west of Frutillar, Vol- 


Figures. 1, 2. Peloridiidae from Huerquehue National 
Park. 1, Peloridiuwm hammoniorum: 2, left Pantinia darwin, 
right Peloridora kuscheli. 


Figure. 3. Temperate rain forest in Chiloé, Cucao. 


cán Calbuco), Province Valdivia (Lago Calaf- 
quén), Province Chiloé (Chepu); XI Region, 
Province Aisén (mountain in the region of 
Coyhaique, Puerto Chacabuco) (China, 1962; 
Cekalovic, 1986). 

Material examined. Chile: 18, 6 larvae, IX 
Region, Province Malleco, Parque Nacional 
Nahuelbuta, near “Administracion”, 37%50'S 
7300'W, 1.100 m, 14-17.X11.1990, mixed 
Nothofagus forest with Araucaria along river, 
and pasture with shrubs, sifting of vegetatio- 
nal debris and moss; 48, 3%, 88 larvae, IX 
Region, Province Cautín, Parque Nacional 
Huerquehue, between “Administracion” and 
Lago Chico, 39%08"-10'S 71%44"W, 800-900 
m, 22-24.X11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer 
forest, sifting of vegetational debris and moss; 
38,3%, X Region, Province Osorno, Parque 
Nacional Puyehue, Aguas Calientes, 40%40'S 
7220'"W, 400-500 m, 31.XI1.1990-1.1.1991, 
Valdivian lauriphyllous forest along river, sif- 
ting of vegetational and alluvial debris, and 
moss. Chile: 1, X Region, Province Llan- 
quihue, Frutillar, 300 m, 23.1X.1954, in soil 
(G. Kuschel) (BMNH). 


Burckhardt € Agost1: Records of South American Peloridiidae 73 


Peloridora minuta China 


Distribution. Recorded from Chile: X Region, 
Province Valdivia (El Mirador) (China, 1962). 

Material examined. Chile: 139,109,X Re- 
gion, Province Osorno, Parque Nacional 
Puyehue, Aguas Calientes, 40%40'S 72%20'W, 
400-500 m, 31.X11.1990-1.1.1991, Valdivian 
lauriphyllous forest along river, sifting of ve- 


| getational and alluvial debris, and moss; 59, 


62, 22 larvae, X Region, Province Osorno, 
Parque Nacional Puyehue, Aguas Calientes to 
Antillanca, 40%45'S 72%15'-20'W, 800 m, 
2.1.1991, mixed Nothofagus forest with bam- 
boo, sifting of vegetational debris and moss. 
Chile: holotype 3 of P. minuta, X Region, Pro- 
vince Valdivia, El Mirador, 1.600 m, 5.1.1957, 
in soil (G. Kuschel) (BMNH). 


Peloridora holdgates China 


| Distribution. Recorded from Chile: X Region, 


Province Chiloé (Cerro San Pedro) (China, 
1962). 

Material examined. Chile: 593, 579, 89 
larvae, X Region, Province Chiloé, Cucao, 30 
km SW Castro, Parque Nacional Chiloé, near 


| “Administracion”, 42%37'S 74%08'W, 30 m, 4- 
'6.1.1991, degraded temperate rain forest, sif- 


ting vegetational debris and moss; 19, 1 larva, 
X Region, Province Chiloé, Parque Nacional 


' de Chiloé, Rancho Grande, near Cucao, 


4233'S 74%02'W, 300-600 m, 4.1.1991, open 
mixed Fitzroya forest and peat bog, sifting of 
vegetational debris and moss. Chile: paraty- 
pes 13,12 of P. holdgater, X Region, Province 
Chiloé, Cerro San Pedro, 600 m, 8.X1.1958 
(G. Kuschel, Royal Soc. Exped.) (BMNH). 


Peloridora spp. 


Material examined. Chile: 138 larvae: X Re- 
glon, Province Osorno, Parque Nacional 
Puyehue, Aguas Calientes, 40%40'S 7220'W, 
400-500 m, 31.XI1.1990-1.1.1991, Valdivian 
lauriphyllous forest along river, sifting of ve- 
getational and alluvial debris, and moss. 
Comment. So far no characters could be 


found to determine Peloridora larvae to spe- 


! 
¡ 


| 


cies. As both P. kuscheli and minuta were found 
at this locality the larvae cannot be associated 


with adults. 


Pantinta darwin: China 
(Fig. 2) 


Distribution. Recorded from Chile: X Region, 
Province Chiloé (Chepu) (China, 1962). 
Material examined. Chile: 38, IX Region, 
Province Cautín, Parque Nacional Huer- 
quehue, between “Administración” and lago 
Chico, 39%08'-10'S 71%44'"W, 800-900 m, 22- 
24.XI11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer fo- 
rest, sifting of vegetational debris and moss; 
19, X Region, Province Chiloé, Cucao, 30 km 
SW Castro, Parque Nacional de Chiloé, near 
“Administración”, 42237'S 74%08'W, 30 m, 4- 
6.1.1991, degraded temperate rain forest, sif- 
ting of vegetational debris and moss. Chile: 
holotype d, paratypes 134,12, X Region, Pro- 
vince Chiloé, Chepu, 4295, 4-11.X.1958 (G. 
Kuschel, Royal Soc. Exped.) (BMNH). 


Pantima sp. 


Material examined. Chile: 38,28, IX Region, 
Province Malleco, Parque Nacional Nahuel- 
buta, near “Administración”, 37%50'S 
73%00'W, 1.100 m, 14-17.X11.1990, mixed 
Nothofagus forest with Araucaria along river, 
and pasture with shrubs, sifting of vegetatio- 
nal debris and moss. 

Comment. The species differs from P. dar- 
win in the shape of the apical process of the 
pygophor, the more pointed apical edges of 
the pygophor, the more broadened parame- 
res, and the different shape of the aedeagus. 


Kuschelorwdes edenensis (China) 


Distribution. Recorded from Chile: XII Re- 
gion, Province Ultima Esperanza (Isla We- 
llington). 


Gen. sp. 


Material examined. Chile: 18, X Region, Pro- 
vince Chiloé, Parque Nacional de Chiloé, Ran- 
cho Grande, near Cucao, 42*33'S 74%02'W, 
300-600 m, 4.1.1991, open mixed Fitzroya fo- 
rest and peat bog, sifting of vegetational de- 
bris and moss. 

Comment. Based on the presence of a na- 
rrow cell between Cul+2 and Pcu on the teg- 
men and the parallel sided, apically truncate 
scutellum the species is related to Kuschelordes, 
Peloridora and Pantima. It differs from all 


74 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


three in the reticulate paranota which are wit- 
hout veins in Kuschelordes, and with two veins 
in Peloridora and Pantinia. 


Unidentified larvae 


Material examined. Chile: 6, larvae, IX Re- 
gion, Province Malleco, Parque Nacional 
Nahuelbuta, near “Administración”, 37%50'S 
73200'"W, 1.100 m, 14-17.X11.1990, mixed 
Nothofagus forest with Araucaria along river, 
and pasture with shrubs, sifting of vegetatio- 
nal debris and moss; 24 larvae, IX Region, 
Province Cautín, Parque Nacional Huer- 
quehue, between “Administración” and Lago 
Chico, 39%08'-10'S 71%44'W, 800-900 m, 22- 
24.X11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer fo- 
rest, sifting of vegetational debris and moss. 

Comments. So far no differences could be 
found between the larvae of Peloridiuum and 
Pantinia, so that the listed material cannot be 
attributed to any of the genera. 


CONCLUSIONS 


The distribution of the South American pelo- 
ridiids is summarised in Fig. 4, Peloridvum ham- 
moniorum 1s the most widely distributed species 
occurring from Nahuelbuta National Park in 
the North to Isla Navarino in the South. It is 
the only species which has been found outside 
Chile (Argentina: Chubut). Peloridora kuscheli 
covers also a fairly large area which ranges 
from Nahuelbuta National Park in the North 
to the region of Coyhaique in the South. The 
other species are more restricted in distribu- 
tion. 

The material from the Nahuelbuta Natio- 
nal Park is interesting as it extends the known 
range of South American peloridiids conside- 
rably to the North. In several localities more 
than one species were found together, and, in 
particular, in the Puyehue National Park, two 
congeneric species (Peloridora kuscheli and mi- 
nuta) were collected. This indicates that at a 
local scale geographical vicariance may have 
been of minor importance as impetus to diver- 
sification. 

The area in which peloridiids occur corres- 
ponds well with Pisano's (1966) zone of hygro- 
morphic plant associations, and Schmithú- 
sen's (1956) region of evergreen temperate 
rain forests. The region with lauriphyllous 


HE Peloridium hammoniorum 
O Peloridora kuscheli 

A Peloridora minuta 

WM Peloridora holdgatei 

A Pantinia darwini 

O Pantinia sp. 

+ Kuscheloides edenensis 
MN Gen. sp. 


Figure. 4. Known distributions of South American Pelori- 
diidae. 


evergreen rain forests between Temuco and 
Chiloé (Fig. 3) has the largest diversity with 6 
species of Peloridiidae. This area corresponds 
more or less with Di CastrI's (1968) “oceanic 
region with mediterranean influence”. 


ACKNOWLEDGMENTS 


We thank M.D. Webb (BMHN, London) for 
the loan of material, P. Greenslade (Canberra) 
and R. Faúndez (MHNG, Geneva) for com- 
ments on the manuscript draft, and N. La- 
voyer (Geneva) for preparing the map. Collec- 


| 
| 


Burckhardt € Agost1: Records of South American Peloridiidae 


ting permits for the National Parks were pro- 
vided by CONAF (Corporación Nacional Fo- 
restal) which is gratefully acknowledged. Fo- 
llowing persons kindly assisted in the field 
work, provided valuable information or offe- 
red their kind hospitality: D. Lanfranco L. 
(Valdivia), J. Petersen C. (Punta Arenas), M. 
Elgueta D. and A. Camousseight (Santiago), 
L.E. Peña G. (Santiago), and the staff of the 
National Parks of Nahuelbuta, Huerquehue, 
Puyehue and Chiloé. 


LITERATURE CITED 


BEsucHEr, C.; D. H. BURCKHARDT, €c 1. LóbL. 1987. The 
“Winkler/Moczarski” eclector as an efficient extractor 
for fungus and litter coleoptera. The Coleopterists 
Bulletin, 47 (4): 392-394. 


=—J 
¡67 


CeEkaLovic, T. 1986. Homoptera Peloridiidae: especies 
chilenas y nuevos registros para P. hammoniorum y P. 
kuscheli. Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile, 57: 49-54. 

Chiva, W.E. 1962. South American Peloridiidae (Hemip- 
tera-Homoptera: Coleorrhyncha). Trans. R. ent. Soc. 
Lond., 114 (5): 131-161. 

Di Casrri, F. 1968. Equisse écologique du Chili. Biologie 
de 'Amérique Australe, 4: 7-52. 

Evans, J.W. 1981. A review of present knowledge of the 
family Peloridiidae and new genera and species from 
New Zealand and New Caledonia (Hemiptera: Insec- 
ta). Rec. Austr. Museum. 34 (5):381-406. 

LANFRANCO L., D. 1977. Entomofauna asociada a los bos- 
ques de Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.) Krasser en 
la Región de Magallanes. 1. Parte: Monte Alto (Río 
Rubens, Última Esperanza). Anales del Instituto de la 
Patagonia, Punta Arenas (Chile), 8: 319-348. 

Pisano, E. 1966. Zonas biogeográficas. In: Geogr. Econ. 
de Chile, Primer apéndice CORFO, Santiago: 62-73. 

SCHMITHUSEN, J. 1956. Die ráumliche Ordnung der chile- 
nischen Vegetation. Bonner Geogr., 17: 1-86. 


A" a % a : SS 
E AÑ EA EN E 
o dr Puma rr ep a 


IA 
Ed 
15% INE, dois! 
mn mu TS 
p Aa Vit? AÑ sh : 
APRO y EE 
IÁMRAGUI dilo 
ORNATO ene! 
E YE y El IA 
mp nd, UNA 5 Lara d? 
ho pta JA Sh ob 
'N POT uh Hide y" 
bibi) rita emy ye id 
E MR O E 
pus A La AA 
pnA 77 MO bro rt UA 
Ad ¿0 $ HOR 0 pan e lá Eee 


TT AI ANA ora Y? bl SAN" 


TEA TN ' 

IEA Í j j 

3 ww Did > 
% Á he 
' 

». MM ES: Y UCA 
mur) Ñ" e do > NU a w) TFR 
Y UO ar Ma adi Ed 0) 


o ra) do: 


ATA COn ' CR WEWE Lar) Hgetdos l ' 
arcas A A IN 
IO RETA e vl ¿ci 0 hiási Mel 
alo were colleciód: TEM ptes hat 
Pl A ¿ICAC E) PA 
A AT as Hi pas to 0 
Micatión hi ] 4 


The dre da mwbacl y oritida SOU yO 
6) ome gro 


EA 


1 DIME AMIA TI, *. man 
Ie eN 


¡aid (A wa 19 
AA uri 


VA AURA 
mito ná o: 
ar rodear 


¿A 
O A o 
a 
y 4 TA 
TU 


*le 


«40 


- A 
ribbii ir OI EA Apuss a 


yt lores DA pen Tí AY 
LA (re A 0h Os por diver lu 

0 ches Peores, IAN LO UA 

A Di Uastiñ 1067 AN 


VACIA) li id) lerebaadl Made 
0 ri Ñ E 


VOTUTECNH 


End «e 


de 


pro a deta 
ARAN Miommder ld 


1 


NOTA CIENTÍFICA 


Rev. Chilena Ent. 
1991, 19: 77-78 


ANOTACIONES SOBRE LA BIOLOGÍA DE PLATYNOCERA VIRESCENS 
(F. £e G.) (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE) 


Juan ENRIQUE BarRIGA! y Thomas Ficher! 


RESUMEN 


Se proporcionan datos sobre la biología de Platynocera virescens (F. et G.), y se citan hospederos de esta 
especie (algunos de ellos por primera vez), todos pertenecientes al género Chusquea (Poaceae). 


ABSTRACT 


Information concerning the biology of Platynocera virescens (F. et G.), and its host plants (some of them 
noticed for first time), all belonging to Chusquea genus (Poaceae) is provided. 


Durante la primavera (1987 y 1989), el 
primero de los autores recibió varios cientos 
de varas de coligúe (Chusquea coleou Desv.) 
para ser utilizados en labores agrícolas 
(Maipú, Prov. Santiago). Estas cañas pro- 
venían de Cunco (Prov. de Cautín), estando la 
mayoría de las cañas atacadas por un insecto 
taladrador, que posteriormente verificamos 
que se trataba de la especie Platynocera virescens 
E” et G., 1859). 

Las varas eran de aproximadamente 3 m de 
largo, con un diámetro de 1 a 3 cm. En ellas se 
encontraban de 1 a 3 larvas distribuidas a lo 
largo de la caña. 

Durante la primavera se colectó una serie 
de imagos de P. virescens revoloteando cerca 
de las pilas. Para cenfirmar la procedencia de 
estos imagos se procedió a abrir una serie de 
cañas, desde donde se obtuvo algunos adultos 
que aún no habían emergido y numerosas lar- 
vas, con un tamaño homogéneo, entre 1,5 a 2 
cm; para estas larvas, por su tamaño, se postu- 
ló que serían todas pertenecientes a una mis- 
ma generación. 

Fue guardado un grupo de coligúes no utl- 
lizados, en un lugar cerrado para confirmar 
que las larvas pertenecían a esta especie. En la 


Facultad de Agronomía, Universidad de Chile, Casi- 
lla 1004, Santiago-Chile. 

(Recibido: 3 de julio de 1991. Aceptado: 10 de octubre 
de 1991.) 


temporada siguiente emergió una serie de 
adultos de P. virescens, por lo que posterior- 
mente se procedió a revisar los coligúes que 
habían sido guardados, comprobándose que 
ya no existían larvas. 

En un instante dado, se encontraban sólo 
dos estadios distintos no consecutivos (larvas 
de estadio intermedio y adultos), postulándo- 
se que su ciclo de vida sería de aproximada- 
mente dos años, similar a lo que se ha observa- 
do en otras especies (observaciones persona- 
les). La oviposición se efectuaría entre sep- 
tiembre y noviembre; las larvas emergerían de 


los huevos entre octubre y diciembre, siendo 


la duración del estado larvario de aproxima- 
damente 18 meses; los ¡magos emergerían en- 
tre septiembre y noviembre. Puesto que no se 
revisó el material durante el invierno, no fue 
posible conocer el período de pupación. 

Se logró que los adultos copularan y que se 
verificara oviposición de huevos fértiles, pero 
no fue posible criarlos por no contar con plan- 
tas vivas de Chusquea sp., se intentó en vano 
que las larvas penetraran en cañas de Bambusa 
sp. (especie ornamental introducida, cuyas 
cañas son huecas). 

Los huevos son pegados con una substancia 
cementante, sobre la superficie de la caña des- 
cubierta en las distintas especies de quilas 
(Chusquea spp.) (así como artificialmente en 
Bambusa sp.). 

La larva penetra en la caña de Chusquea sp., 
y luego la perfora en su parte central (es una 


78 Rev. Chilena Ent. 19, 1991 


caña maciza, totalmente leñosa), en forma 
descendente, produciendo una galería de 
unos 40 cm de largo. 

Posteriormente se hicieron prospecciones 
en algunas localidades de la zona central, para 
ubicar nuevos hospederos de esta especie. 


En las localidades de Quintay y Peñuelas 
(Prov. Valparaíso, octubre a diciembre, 1989) 
se comprobó que P. virescens atacaba plantas 
de Chusquea cumingú Nees, en ellas se capturó 
larvas y adultos. 

En la localidad de Alto de Vilches (Prov. 
Talca, noviembre y diciembre, 1989 y 1990) se 
comprobó el ataque de esta especie sobre plan- 
tas de Chusquea coleou Desv., colectándose lar- 
vas y adultos. 


En la localidad de Las Trancas (Prov. Nu- 
ble, diciembre y enero, 1989 y 1990), se encon- 
tró plantas de Chusquea quila Kunth. y Chus- 
quea coleou Desv. atacadas. 


En las localidades de Lonquimay y “Termas 
de Río Blanco (Prov. de Malleco, abril de 


1988), se encontró ataque tanto en Chusquea: 
quila Kunth. como en Chusquea coleou Desv. 

La especie Platynocera virescens había sido 
citada anteriormente por Krahmer (1990) 
como atacando quilas (Chusquea quila). 

La distribución geográfica dada por Cerda 
(1986) para esta especie, comprendía las pro- 
vincias de Aconcagua, Valparaíso y Ñuble (V y: 
VII Regiones) y Krahmer (1990) la cita para 
Valdivia (X Región), por lo que con este traba- 
jose comprueba una distribución más o menos 
continua entre la V y la IX Regiones. 


LITERATURA CITADA 


CERDA, M. 1986. Lista sistemática de los cerambicidos 
chilenos (Coleoptera: Cerambycidae). Rev. Chilena 
Ent., 14: 29-39. 

FAIRMAIRE, L. et P. GERMAIN. 1859. Révision des co- 
léopteres du Chili. Ann. Soc. Ent. Fr. (Sér. 3) 7: 483- 
DSZ: 

KRAHMER, E. 1990. Feromona de una especie de Ceram- 
bycidae atrae a los machos de otro género (Co- 
leoptera). Rev. Chilena Ent., 18: 95. 


"E 


CONTENIDO 


cosa Dv case DD BUREKHARDE € DD. AGOST 
ARTIGAS, J.N. 8: N. PAPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera): keys for 
identification with an atlas of female spermathecae and other morphological 
details. VIL.5. Subfamily Stenopogoninae Hull-Tribe Tillobromini, with descrip- 
tions of three new genera and two new species, and a catalogue of the Neotropical 
A A o 
Asís, J.D.; S.F. Gayubo y J. Tormos. Comportamiento nidificador de dos especies de 
Cerceris y descripción de la larva madura de C. bicincta (Hymenoptera: Sphecidae) 
AskEevoLD, 1.S. On some poorly known, missidentified and mislabelled Chilean 
Cireomattre (Ar a ooo 
BARRIGA, J.E. y T. FicHer. Observaciones biológicas sobre Callisphyris molorchoides 
(Guérin-Méneville, 1838) (Coleoptera: Cerambycidae) .......oooomocccocooo.. 
BARRIGA, J.E. y T. FicHeT. Anotaciones sobre la biología de Platynocera virescens (F. et 
E.) Cobos (Sri 
BurckHaArDr, D. 8 D. Acosri. New records of South American Peloridiidae (Ho- 
mona: Coda A 
BusTAMANTE, Í. véase A. CAMOUSSEIGHT € I. BUSTAMANTE ......0.o.o.oooooooo.oo.. 
CAMOUSSEIGHT, A. e l. BusraMaANTE. Descripción de los huevos de los fásmidos 
(Birrasmatodea: Pseudophasmatidae) de Chile eo 
Chiapa, E. y M. Rojas. Observaciones en la nidificación de Pachodynerus peruensis 
(Sanissure)(Eymenoptera: Vespidae: BUmeninae) 
Henri case JOE: BARRIGA y DT. PICHED aos e eo a paa 
CAYUEO, DE VES e A o 
IpInza, R., J.H.; A. Lucero y M.A. MoraLes. Hermetismo en sociedades de Campo- 
notus morosus Smith, 1858 (Hymenoptera: Formicidae) en nidos artificiales ... 
LUCERO, Ay Véa (al y El AI A 
MORALES, Mid VET a e UTA 
NUMHAUSER , T., J. Observaciones sobre el género Phycnosiphorus: grupo fasciatus 
(Croma ico A 
APAERO Ne ase JUN. ARTIGAS Sc Ni PAPAVERO) 000. o a oe a ea 
ROJAS, Milo VETE) MAI O 
Sárz, F. Fecas de herbívoros introducidos en Chile semiárido como hábitat para el 
TESTA A O 
Tormos, J. véase J.D. SiS Tela Ue ala Sl ri IRM O A 0 A 


(local 
pon CAM aid O, . 
dos AA” eN m 
e ete ei den AAA 
Un pd oli sipolas el odos -scionh. 
hear: OS Ñ ' (arbiy 
race dius O 7 pa WA 
0 ' Lane. Mi. vih. 
edo 8 1 IP AA 
le abre pen yod. 0: dN ¿AL pj MT. oN AM 
y , id Pis 
JAVA hd sh nobroilibla al OÍ AR a 
| (sitcom aa porro aay 
AMAN anat 
A má de A 
NN 0 e pil eto orbita AMO AM om Amd 
IA ee bis epica cas mebilaaoT rro) BON) der aa Ji yde 
E AS IA o Ant Aran Adv A 8 fs 
MI | JA A 


mó de 


1er e : 


Hz 


hno o (% quets EA A AAA 119 19: sd0 aros dr Na E Me 


AS AN | IN TT 
A on OMA VA AAA MR Ae 
A A y a | MOR AO A pr 
e lali idid omo obisalricos aid e rebiboaal aro dead Hb e, 
(ZU Ce Oi | | ÓN EN ab oloT 
IN A A E 44 Red 
: E do E : E, 


al er 
HA 


y 


SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA 
CASILLA 21132 


SANTIAGO 21 
CHILE 


Impreso por EDITORIAL UNIVERSITARIA 


Ú 
y ] 
2U 
> 
pe: 
e 
E 
7 
- rt 
e 
= 
“ 
le 
O 

1 


TU 


3.2044 110 344 678 


as > 


. É z j a : S A . 4 5 " A 
OS - > , + dame Gio 


AAN pi 


rn 


E 
Ie 


AO 

ES PA 
E 
ESTAN 


a NE 
AS mo 
LOA AO A AA A a
Internet Archive Audio

Featured

Top

Images

Featured

Top

Software

Featured

Top

Texts

Featured

Top

Video

Featured

Top

Mobile Apps

Browser Extensions

Archive-It Subscription

Save Page Now

Full text of "Revista chilena de entomología"

See other formats
